Український часопис ветеринарних наук

Порівняння фенотипних та генотипних методів визначення Pasteurella multocida у несучок у провінції Карбала, Ірак

Мазін Раззак Аль-Зубайді*, Мухаммед Абдул-Кадем, Абдулла Абдулазіз Халіл Шіхан, Хайдер Алі Мухаммед

mazin.r@uokerbala.edu.iq

Завантажити статтю
Анотація

Pasteurella multocida є значущим патогеном, який періодично уражує пташині стада, часто спричиняючи високу смертність і значні економічні збитки. Це дослідження було спрямоване на виділення Pasteurella multocida від курей-несучок у провінції Кербела, визначення частоти її виявлення та підтвердження інфекції за допомогою молекулярного аналізу. Загалом було відібрано 90 зразків від 30 курей із ознаками інфекції (зокрема виділеннями з носової порожнини, анорексією та раптовою загибеллю). Зразки включали 30 носових мазків, 30 зразків грудної кістки та 30 зразків легень. Виділення бактерій проводили на селективному середовищі Cystine Glucose Trypticase та кров’яному агарі в аеробних умовах. Підозрілі колонії ідентифікували на основі їх морфологічних характеристик, запаху та біохімічних властивостей. Молекулярне виявлення генів вірулентності здійснювали за допомогою ПЛР із використанням специфічних генних послідовностей. У курей спостерігали клінічні ознаки, зокрема підвищення температури тіла, слизово-гнійні виділення з носової порожнини, водянисту діарею та раптову загибель. Під час патологоанатомічного дослідження виявлено значне повнокрів’я легень (гнійну пневмонію) та генералізоване повнокрів’я внутрішніх органів, особливо кишечника. Виділені ізоляти формували сірі округлі колонії з гладкою або слизовою поверхнею, без гемолітичних властивостей, із характерним «мишачим» запахом після 48 годин аеробної інкубації за температури 37 °C. Відсутність росту на агарі МакКонкі та негативний результат уреазного тесту використовували для підтвердження ідентифікації. Найвищий рівень позитивних результатів культурального дослідження встановлено для носових мазків (66,67 %), далі – для зразків грудної кістки (60 %) та легень (20 %). За результатами ПЛР найвищу ефективність виявлення також отримано для зразків грудної кістки (43,33 %), потім для носових мазків (36,67 %) та легень (10 %). Враховуючи агресивний вплив цього захворювання на птахівничу галузь, необхідно вдосконалювати діагностичний моніторинг і заходи біобезпеки для запобігання подальшому поширенню інфекції на птахофермах Іраку. Результати дослідження можуть бути використані у практиці ветеринарної діагностики для своєчасного виявлення Pasteurella multocida та удосконалення заходів контролю холери птиці на птахівничих фермах

Ключові слова

пастерельоз; холера птиці; культуральний метод; ген ecbJ; птиця

ЦИТУВАТИ
Al-Zubaidi, M.R. , Abdulkadhim, M., Sheehan , A.A.K. , & Muhammed, H.A. (2026). Comparison of phenotypic and genotypic methods of Pasteurella multocida in laying chickens in Karbala Province, Iraq. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 17(3), 47-59. https://doi.org/10.31548/veterinary3.2026.47
Використані джерела
  1. Abd El-Ghany, W., Ahmed, H.A., Qandoos, A.Z., & Bosila, M.A.E.-R.B. (2020). The efficacy of vaccination of layer chickens with inactivated fowl cholera bacterin prepared from local Egyptian strains of Pasteurella multocida. Slovenian Veterinary Research, 57(4), 169-178. doi: 10.26873/SVR-1000-2020.
  2. Abo-Elnaga, T.R., & Osman, W.A. (2012). Detection of pathogens of condemned lungs of one humped camels (Camelus dromedarius) slaughtered in Matrouh abattoirs, Egypt. Global Veterinaria, 9(3), 290-296. doi: 10.5829/idosi.gv.2012.9.3.6581.
  3. AL-Shemmari, I.G.M., & Al-Judi, A.M.H. (2014). Molecular identification by multiplex polymerase chain reaction of Pasteurella multocida in cattle and buffaloes in Baghdad. The Iraqi Journal of Veterinary Medicine, 38(1), 99-106. doi: 10.30539/iraqijvm.v38i1.261.
  4. Boulianne, M., Blackall, P.J., Hofacre, C.L., Ruiz, J.A., Sandhu, T.S., Hafez, H.M., Chin, R.P., Register, K.B., & Jackwood, M.W. (2020). Pasteurellosis and other respiratory bacterial infections. In D.E. Swayne et al. (Eds.), Diseases of poultry (14th ed., pp. 831-889). doi: 10.1002/9781119371199.ch19. Hoboken: John Wiley & Sons, Ltd.
  5. Chen, N.N., Liu, B., Xiong, P.W., Guo, Y., He, J.N., Hou, C.C., Ma, L.X., & Yu, D.Y. (2018). Safety evaluation of zinc methionine in laying hens: Effects on laying performance, clinical blood parameters, organ development, and histopathology. Poultry Science, 97(4), 1120-1126. doi: 10.3382/ps/pex400.
  6. Eissa, N., Hussin, K., & El-Mabrok, A. (2019). Isolation, identification and antibiogram of Pasteurella multocida isolated from apparently healthy rabbits in Al-Bayda, Libya. Benha Veterinary Medical Journal, 36(1), 227-233. doi: 10.21608/bvmj.2019.114265.
  7. El-Demerdash, A.S., Mowafy, R.E., Fahmy, H.A., Matter, A.A., & Samir, M. (2023). Pathognomonic features of Pasteurella multocida isolates among various avian species in Sharkia Governorate, Egypt. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 39, article number 335. doi: 10.1007/s11274-023-03774-2.
  8. Geda, A.M. (2024). Fowl cholera in chickens: Current trends in diagnosis and phenotypic drug resistance in Gondar City, Ethiopia. Veterinary Medicine International, 2024(1), article number 6613019. doi: 10.1155/vmi/6613019.
  9. Halder, S., Das, S., Nath, S.K., Kundu, S.K., Islam, M.S., Chowdhury, S., & Masuduzzaman, M. (2021). Prevalence of some common bacterial diseases in commercial poultry farm. Ukrainian Journal of Veterinary and Agricultural Sciences, 4(2), 44-51. doi: 10.32718/ujvas4-2.08.
  10. Hasani, S.J., Enferadi, A., Sarani, S., & Nofouzi, K. (2025). A review of pasteurellosis in humans and animals. Journal of Zoonotic Diseases, 9(3), 838-851. doi: 10.22034/jzd.2024.18077.
  11. Hussein, A., Adam, H., Al-Baqir, A.M., & Megahed, M.M. (2025). Microbial agents causing mortalities in turkey flocks in Egypt: An update on the epidemiological situation. World’s Veterinary Journal, 15(2), 523-533. doi: 10.54203/SCIL.2025.WVJ52.
  12. Kaore, M., Singh, K.P., Palanivelu, M., Kumar, A.M., Reddy, M.R., & Kurkure, N.V. (2018). Patho-epidemiology of respiratory disease complex pathogens (RDPs) in commercial chicken. Indian Journal of Veterinary Pathology, 42(4), 231-238. doi: 10.5958/0973-970X.2018.00056.1.
  13. Kasivalu, J.K., Omwenga, G.I., & Aboge, G.O. (2022). Molecular detection and characterization of Pasteurella multocida infecting camels in Marsabit and Turkana counties, Kenya. International Journal of Microbiology, 2022(1), article number 9349303. doi: 10.1155/2022/9349303.
  14. Knight, D.P., Paine, J.E., & Speller, D.C. (1983). A selective medium for Pasteurella multocida and its use with animal and human specimens. Journal of Clinical Pathology, 36(5), 591-594. doi: 10.1136/jcp.36.5.591.
  15. Kubatzky, K.F. (2022). Pasteurella multocida toxin – lessons learned from a mitogenic toxin. Frontiers in Immunology, 13, article number 1058905. doi: 10.3389/fimmu.2022.1058905.
  16. Limmathurotsakul, D., et al. (2010). Defining the true sensitivity of culture for the diagnosis of melioidosis using Bayesian latent class models. PLoS ONE, 5(8), article number e12485. doi: 10.1371/journal.pone.0012485.
  17. MacFaddin, J.F. (2000). Biochemical tests for identification of medical bacteria (3rd ed.). Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins.
  18. Markey, B., Leonard, F., Archambault, M., Cullinane, A., & Maguire, D. (2013). Clinical veterinary microbiology (2nd ed.). Edinburgh: Mosby Elsevier.
  19. Mohamed, M.A., Mohamed, M.-W.A., Ahmed, A.I., Ibrahim, A.A., & Ahmed, M.S. (2012). Pasteurella multocida in backyard chickens in Upper Egypt: Incidence with polymerase chain reaction analysis for capsule type, virulence in chicken embryos and antimicrobial resistance. Veterinaria Italiana, 48(1), 77-86.
  20. Narcana, I.K., Suardana, I.W., & Besung, I.N. (2020). Molecular characteristics of Pasteurella multocida isolates from Sumba Island at East Nusa Tenggara Province, Indonesia. Veterinary World, 13(1), 104-109. doi: 10.14202/vetworld.2020.104-109.
  21. Oslan, S.N.H., Tan, J.S., Yusoff, A.H., Sulaiman, A.Z., Awang, M.A., Lazim, A.M., Lim, S.J., Oslan, S.N., Saad, M.Z., & Ariff, A.B. (2022). Pasteurellosis vaccine commercialization: Physiochemical factors for optimum production. Processes, 10(7), article number 1248. doi: 10.3390/pr10071248.
  22. Owain, M.S., Hasan, M.S., Owain, F.S., & Atiyah, A.G. (2026). Molecular detection and epidemiological characterization of Pasteurella multocida associated with respiratory disease in sheep in Salah Alden province, Iraq: Pasteurellosis in sheep. Letters in Animal Biology, 6(1), 19-24. doi: 10.62310/liab.v6i1.316.
  23. Piorunek, M., Brajer-Luftmann, B., & Walkowiak, J. (2023). Pasteurella multocida infection in humans. Pathogens, 12(10), article number 1210. doi: 10.3390/pathogens12101210.
  24. Ranjan, R., Panda, S.K., Acharya, A.P., Singh, A.P., & Gupta, M.K. (2011). Molecular diagnosis of haemorrhagic septicaemia – a review. Veterinary World, 4(4), 189-192.
  25. Rodrigo, C.H., Arachchige, S.N.K., Bushell, R.N., Anwar, A., Huang, J., Scott, P., & Noormohammadi, A.H. (2026). Complex pathogen interactions in upper respiratory tract infections in commercial free-range layers: A cross-sectional study. Veterinary Microbiology, 319, article number 111079. doi: 10.1016/j.vetmic.2026.111079.
  26. Sadoon, A.S. (2022). Clinical and subclinical mastitis in buffalue in Mosul area, Iraq. Iraqi Journal of Veterinary Sciences, 36(1), 177-186. doi: 10.33899/ijvs.2021.129644.1671.
  27. Siddique, W., Mahboob, S., Rauf, W., Jabeen, S., Naseem, Z., & Shafaqat, F. (2025). Pasteurella multocida: Composition, genetics and biosynthesis of capsular polysaccharides (CPS) of serotypes A, B, D, E and F. Research Journal of Veterinary Practitioners, 13(2), 26-38. doi: 10.17582/journal.rjvp/2025/13.2.26.38.
  28. Tabatabaei, M., & Abdolahi, F. (2023). Molecular evaluation of sheep and goats isolates of Pasteurella multocida and their antibiotic resistance. Veterinary Research Forum, 14(9), 481-487. doi: 10.30466/vrf.2022.556438.3524.
  29. Tawor, A.B., Erganiş, O., & Balevi, A. (2025). Virulence genes of Pasteurella multocida cap B and its potential cross protection in mice. International Microbiology, 28, 1895-1903. doi: 10.1007/s10123-025-00658-3.
  30. Tesfaye, A.B., Werid, G.M., Tao, Z., You, L., Han, R., Zhu, J., Fu, L., & Chu, Y. (2025). Advances in Pasteurella multocida vaccine development: From conventional to next-generation strategies. Vaccines, 13(10), article number 1034. doi: 10.3390/vaccines13101034.
  31. Tsehay, M.T., Zeru, A.G., & kindu Mengist, G. (2025). Review on fowl cholera. Journal of Life Sciences Research and Reviews, 3(1), 1-4. doi: 10.47363/JLSRR/2025(3)131.