Український часопис ветеринарних наук

Вплив наносполук гемранію і заліза на показники насичених жирних кислот у крові свиней залежно від вегетативної регуляції

Світлана Кравчук, Олена Журенко, Дмитро Криворучко, Віталій Журенко, Ігор Грищук
Завантажити статтю
Анотація

Актуальність виконаного досліду пов’язана із розробкою нових методів підвищення продуктивності свиней завдяки збалансуванню метаболічних процесів в організмі. Головною метою було визначити зміни показників насичених жирних кислот в організмі свиней при використанні кормової добавки наноаквахелатів з урахуванням індивідуальних особливостей організму. Формування дослідних груп тварин виконували за пульсометричним дослідженням, відповідно до якого було отримано три групи по 10 свиней, які потім розподіляли на дві групи контрольну і дослідну по 5 тварин. Дослідній групі за допомогою випоювання задавали суміш наносполуки мікроелементів заліза в дозі 3 мг/добу та германію – 0,01 мг/добу. Вміст насичених жирних кислот оцінювався за допомогою методу газової хроматографії. За результатами виконаного дослідження встановлено, що у крові свиней контрольної групи із нормотонією збільшувався вміст насичених жирних кислот: міристинової (Р < 0,01), гептадеканової (Р < 0,05), бегенової (Р < 0,01). У крові свиней дослідної групи з симпатотонією зменшувався вміст насичених жирних кислот: міристинової (Р < 0,01), пентадеканової (Р < 0,01), гептадеканової (Р < 0,01), бегенової (Р < 0,01). У крові свиней контрольної групи із ваготонією вміст насичених жирних кислот збільшувався порівняно з дослідною групою. Встановлено, що у дослідних свиней нормотонеків жирні кислоти з найбільшою часткою, такі як пальмітинова – менша на 12,1 %, а стеаринова кислота – на 10,7 % (Р < 0,01). У свиней симпатотоніків контрольної групи спостерігався більший вміст пальмітинової кислоти на 15,4 % (Р < 0,01) та стеаринової – на 17,8 % (Р < 0,001). У дослідних свиней ваготоніків – менший вміст пальмітинової на 14,8 % (Р < 0,01) та стеаринової кислоти на 11,8% (Р < 0,001). За результатами дослідження відмічався позитивний вплив суміші наносполук заліза і германію на показники обміну насичених жирних кислот, а розподілення свиней відповідно до індивідуальних особливостей організму, покращило точність отриманих даних

Ключові слова

обмін речовин; нанопрепарат; продуктивні тварини; автономна нервова система; ліпіди

ЦИТУВАТИ
Kravchuk, S., Zhurienko, O., Kryvoruchko, D., Zhurenko, V., & Hryshchuk, I. (2025). The influence of hemranium and iron nanocomposites on saturated fatty acid levels in pig blood, depending on vegetative regulation. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 16(2), 76-94. https://doi.org/10.31548/veterinary2.2025.76
Використані джерела

[1] Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council “On the Protection of Animals Used for Scientific Purposes”. (2010, September). Retrieved from https://eur-lex. europa.eu/LexUriServ/LexUriServ.do?uri=OJ:L:2010:276:0033:0079:en:PDF.

[2] European Convention for the Protection of Vertebrate Animals used for Experimental and Other Scientific Purposes. (1986, March). Retrieved from https://rm.coe.int/168007a67b.

[3] Feng, Y., Chen, X., Chen, D., He, J., Zheng, P., Luo, Y., & Huang, Z. (2023). Dietary grape seed proanthocyanidin extract supplementation improves antioxidant capacity and lipid metabolism in finishing pigs. Animal Biotechnology, 34(8), 4021-4031. doi: 10.1080/10495398.2023.2252012.

[4] Folch, J., Lees, M., & Stanley, G.S. (1957). A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues. Journal of Biological Chemistry, 226(1), 497-509. doi: 10.1016/ S0021-9258(18)64849-5.

[5] Grela, E.R., Świątkiewicz, M., Florek, M., Bąkowski, M., & Skiba, G. (2021). Effect of inulin source and a probiotic supplement in pig diets on carcass traits, meat quality and fatty acid composition in finishing pigs. Animals, 11(8), article number 2438. doi: 10.3390/ ani11082438.

[6] Guo, Z., Chen, X., Huang, Z., Chen, D., Yu, B., Chen, H., &amp; Luo, Y. (2021). Dietary dihydromyricetin supplementation enhances antioxidant capacity and improves lipid metabolism in finishing pigs. Food & Function, 12(15), 6925-6935. doi: 10.1039/ D0FO03094E.

[7] Han, M., Yin, Y., Gong, S., Shi, H., Li, Q., Lian, X., & Guo, Q. (2024). Effects of dietary Eucommia ulmoides leaf extract supplementation on growth performance, meat quality, antioxidant capacity, and lipid metabolism of finishing pigs. Antioxidants, 13(3), article number 320. doi: 10.3390/antiox13030320.

[8] Hardoňová, M., Šiarnik, P., Sivakova, M., Sucha, B., Vlček, M., Imrich, R., & Kollar, B. (2021). Autonomic nervous system function in newly diagnosed multiple sclerosis: Association with lipid levels and insulin resistance. Physiological Research, 70, 875-882. doi: 10.33549/ physiolres.934695.

[9] Imai, J., & Katagiri, H. (2022). Regulation of systemic metabolism by the autonomic nervous system consisting of afferent and efferent innervation. International Immunology, 34(2), 67-79. doi: 10.1093/intimm/dxab023.

[10] Ivanov, V.O., Konks, T.M., & Fomichenko, M.O. (2024). The effectiveness of vermihumus and the biological preparation “Nanoverm” in feeding pigs. Tavria Scientific Bulletin, 138, 287-295. doi: 10.32782/2226-0099.2024.138.35.

[11] Khan, N., Li, Z., Ali, A., Quan, B., Kang, J., Ullah, M., & Shafiq, M. (2025). Comprehensive transcriptomic analysis of myostatin-knockout pigs: insights into muscle growth and lipid metabolism. Transgenic Research, 34, article number 12. doi: 10.1007/s11248-025-00431-2.

[12] Kovalchuk, O., Tomchuk, V., Danchuk, V., Krawchuk, S., & Karpovskyi, V. (2024). Lipid metabolism indicators in sow blood under the influence of iron and germanium nanocompounds. Scientific Reports of the National University of Life and Environmental Sciences of Ukraine, 20(2). doi: 10.31548/dopovidi.2(108).2024.018.

[13] Law of Ukraine No. 249 “On the Procedure for Carrying Out Experiments and Experiments on Animals by Scientific Institutions”. (2012, March). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/ laws/card/z0416-12.

[14] Law of Ukraine No. 3447-IV “On the Protection of Animals from Cruelty”. (2006, February). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/3447-15#Text.

[15] Liu, Y., Peng, Y., Chen, C., Ren, H., Zhu, J., Deng, Y., & Xiao, Y. (2024). Flavonoids from mulberry leaves inhibit fat production and improve fatty acid distribution in adipose tissue in finishing pigs. Animal Nutrition, 16, 147-157. doi: 10.1016/j.aninu.2023.11.003.

[16] Melnychuk, D.O., & Hryshchenko, V.A. (2014). Exchange of bile pigments under the action of ecopathogenic factors on organism. Ukrainian biochemical journal, 86(5), article number 156.

[17] Ohorodnichuk, H., & Zagamula, V. (2024). Intensity of growth of pigs in the growing facility with the addition of the biological supplement “MikoStop” to the diet. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. Series: Agricultural Sciences, 26(101), 145-149. doi: 10.32718/nvlvet-a10125.

[18] Rao, S., Cui, Z., Zhang, L., Ma, S., Huang, S., Feng, L., & Tan, C. (2023). Effects of dietary adenosine and adenosine 5’-monophosphate supplementation on carcass characteristics, meat quality, and lipid metabolism in adipose tissues of finishing pigs. Meat Science, 201, article number 109174. doi: 10.1016/j.meatsci.2023.109174.

[19] Rao, Z.X., Tokach, M.D., Woodworth, J.C., DeRouchey, J.M., Goodband, R.D., & Gebhardt, J.T. (2023). Effects of various feed additives on finishing pig growth performance and carcass characteristics: A review. Animals, 13(2), article number 200. doi: 10.3390/ ani13020200.

[20] Scerra, M., Foti, F., Caparra, P., Cilione, C., Bognanno, M., Paolo, F., & Chies, L. (2024). Effects of feeding bergamot pulp and olive leaves on performance and meat quality in Apulo-Calabrese pigs. Veterinary and Animal Science, 23, article number 100336. doi: 10.1016/j.vas.2024.100336.

[21] Tang, Q., Li, W., Ren, Z., Ding, Q., Peng, X., Tang, Z., & Sun, Z. (2023). Different fatty acid supplementation in low-protein diets regulate nutrient utilization and lipid and amino acid metabolism in weaned pigs model. International Journal of Molecular Sciences, 24(10), article number 8501. doi: 10.3390/ijms24108501.

[22] Teng, T., Sun, G., Ding, H., Song, X., Bai, G., Shi, B., & Shang, T. (2023). Characteristics of glucose and lipid metabolism and the interaction between gut microbiota and colonic mucosal immunity in pigs during cold exposure. Journal of Animal Science and Biotechnology, 14, article number 84. doi: 10.1186/s40104-023-00886-5.

[23] Tian, Z., Cui, Y., Lu, H., Wang, G., & Ma, X. (2021). Effect of long-term dietary probiotic Lactobacillus reuteri 1 or antibiotics on meat quality, muscular amino acids and fatty acids in pigs. Meat Science, 171, article number 108234. doi: 10.1016/j.meatsci.2020.108234.

[24] Xu, M., Chen, X., Huang, Z., Chen, D., Li, M., He, J., & Yu, B. (2022). Effects of dietary grape seed proanthocyanidin extract supplementation on meat quality, muscle fiber characteristics and antioxidant capacity of finishing pigs. Food Chemistry, 367, article number 130781. doi: 10.1016/j.foodchem.2021.130781.

[25] Xu, Z., Chen, W., Wang, L., Zhou, Y., Nong, Q., Valencak, T.G., & Shan, T. (2021). Cold exposure affects lipid metabolism, fatty acids composition and transcription in pig skeletal muscle. Frontiers in Physiology, 12, article number 748801. doi: 10.3389/fphys.2021.748801.

[26] Yao, C.G., Pang, D.X., Lu, C., Xu, A., Huang, P.X., Ouyang, H., & Yu, H. (2021). Investigation on the effect of two fat metabolism related pathways on intramuscular fat content in pigs. Pakistan Journal of Zoology, 53(4), 1353-1366. doi: 10.17582/journal.pjz/20190407110454.

[27] Zhang, H., Jia, M., Su, Y., & Zhu, W. (2022). Feeding frequency affects glucose and lipid metabolism through SIRT1/AMPK pathway in growing pigs with the same amount of daily feed. The Journal of Nutritional Biochemistry, 100, article number 108919. 10.1016/j. jnutbio.2021.108919.

[28] Zhang, L., Li, F., Guo, Q., Duan, Y., Wang, W., Yang, Y., & Yin, Y. (2021). Different proportions of branched-chain amino acids modulate lipid metabolism in a finishing pig model. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 69(25), 7037-7048. doi: 10.1021/acs.jafc.1c02001.

[29] Zhou, H., Yu, B., Sun, J., Liu, Z., Chen, H., Ge, L., & Chen, D. (2021). Short-chain fatty acids can improve lipid and glucose metabolism independently of the pig gut microbiota. Journal of Animal Science and Biotechnology, 12, article number 61. doi: 10.1186/s40104-021-00581-3.