Український часопис ветеринарних наук

Інфекції гостриками у рудих вивірок на межі міста та лісу

Діана Фещенко, Оксана Згозінська, Тетяна Романишина, Анастасія Лахман
Завантажити статтю
Анотація

Зростання взаємопроникнення міських і лісових екосистем підвищує ризик міжвидової передачі паразитів, що визначає актуальність вивчення паразитофауни диких ссавців. Метою дослідження було з’ясувати поширеність та видовий склад оксіюрідних нематод у популяції рудих вивірок (Sciurus vulgaris), які мешкають у лісопаркових зонах Полісся (Україна). Було проаналізовано 191 зразок фекалій, зібраних у період з вересня по грудень 2023 року, із застосуванням інтегрованого підходу, що включав відеоспостереження у природному середовищі, систематичний відбір проб і мікроскопічне дослідження морфології яєць гельмінтів. Для автоматизованої ідентифікації вивірок використовували модель комп’ютерного зору YOLOv5. У результаті виявлено три види паразитів із надродини Oxyuroidea. Найпоширенішим був Trypanoxyuris sciuri, типовий для вивірок, який зафіксовано у 70,6 % тварин (12 із 17 особин; 95 % CI: 44,04–89,69). Syphacia obvelata виявлено у 11,8 % (2 із 17; 95 % CI: 1,46–36,44), а Aspiculuris dinniki – у 5,9 % (1 із 17; 95 % CI: 0,15–28,69). Культивування яєць S. obvelata у лабораторних умовах дало змогу описати морфологію личинок L1, тоді як A. dinniki не розвивалась, що підтвердило її специфічні вимоги до хазяїна. Ці результати підкреслили високу поширеність T. sciuri серед білок і засвідчили потенційну передачу S. obvelata та A. dinniki в популяціях цих тварин. Практична цінність роботи полягає у розширенні знань про різноманіття гельмінтів і міжвидові зв’язки паразитів у перехідних місько-лісових екосистемах. Отримані результати можуть бути використані для вдосконалення ветеринарно-санітарних заходів, профілактики паразитарних захворювань і розробки стратегій моніторингу, спрямованих на збереження здоров’я диких популяцій і мінімізацію ризиків для свійських тварин та людини

Ключові слова

паразити дикої природи; шлункові нематоди; Syphacia; гострики у білок

ЦИТУВАТИ
Feshchenko, D., Zghozinska, O., Romanishina, T., & Lakhman, A. (2025). Pinworm infections in red squirrels at the urban-forest interface. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 16(3), 94-106. https://doi.org/10.31548/veterinary3.2025.94
Використані джерела

[1] Abdel-Gaber, R. (2016). Syphacia obvelata (Nematode, Oxyuridae) infecting laboratory mice Mus musculus (Rodentia, Muridae): Phylogeny and host-parasite relationship. Parasitology Research, 115(3), 975-985. doi: 10.1007/s00436-015-4825-0.

[2] Abdel-Gaber, R., Abdel-Gaber, F., Quraishy, S., Morsy, K., Saleh, R., & Mehlhorn, H. (2018). Morphological re-description and 18S rDNA sequence confirmation of the pinworm Aspiculuris tetraptera (Nematoda, Heteroxynematidae) infecting the laboratory mouse Mus musculus. Journal of Nematology, 50(2), 117-132. doi: 10.21307/jofnem-2018-026.

[3] Behnke, J.M., Stewart, A., Bajer, A., Grzybek, M., Harris, P.D., Lowe, A., Ribas, A., Smales, L., & Vandegrift, K.I. (2015). Bank voles (Myodes glareolus) and house mice (Mus musculus) in Europe are each parasitised by their own distinct species of Aspiculuris (Nematoda, Oxyurida). Parasitology, 142(12), 1493-1505. doi: 10.1017/S0031182015000864.

[4] Bochkovskiy, A., Wang, C.-Y., & Liao, H.-Y.M. (2020). YOLOv4: Optimal speed and accuracy of object detection. ArXiv. doi: 10.48550/arXIV.2004.10934.

[5] Chawla, S., Jena, S., & Prusty, B. (2015). Different treatment regimens for eradication of pinworm (Syphacia obvelata) infection in mice colonies. Journal of Animal Research, 5(2), 321-324. doi: 10.5958/2277-940X.2015.00055.8.

[6] DSTU EN ISO/IEC 17025:2019. (2019). General requirements for the competence of testing and calibration laboratories. Retrieved from https://online.budstandart.com/ua/catalog/doc-page.html?id_doc=88724.

[7] European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Experimental and Other Scientific Purposes. (1986, March). Retrieved from https://eur-lex.europa.eu/legal-content/EN/ALL/?uri=CELEX:21999A0824(01).  

[8] Galbreath, K.E., et al. (2019). Building an integrated infrastructure for exploring biodiversity: Field collections and archives of mammals and parasites. Journal of Mammalogy, 100(2), 382-393. doi: 10.1093/jmammal/gyz048.

[9] Gerwin, P.M., Ricart Arbona, R.J., Riedel, E.R., Lepherd, M.L., Henderson, K.S., & Lipman, N.S. (2017). Evaluation of traditional and contemporary methods for detecting Syphacia obvelata and Aspiculuris tetraptera in laboratory mice. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science, 56(1), 32-41.

[10] Grandón-Ojeda, A., et al. (2022). Patterns of gastrointestinal helminth infections in Rattus rattus, Rattus norvegicus, and Mus musculus in Chile. Frontiers in Veterinary Science, 9, article number 929208. doi: 10.3389/fvets.2022.929208.

[11] Hamill, K. (2023). The ecology and conservation of the Eurasian red squirrel (Sciurus vulgaris): Parasites and health. (Doctoral thesis, Nottingham Trent University, Nottingham, United Kingdom).

[12] Islam, M.M., Farag, E., Hassan, M.M., Bansal, D., Awaidy, S.A., Abubakar, A., Al-Romaihi, H., & Mkhize-Kwitshana, Z. (2020). Helminth parasites among rodents in Middle Eastern countries: A systematic review and meta-analysis. Animals, 10(12), article number 2342. doi: 10.3390/ani10122342.

[13] Jarošová, J., Antolová, D., Zaleśny, G., & Halán, M. (2020). Oxyurid nematodes of pet rodents in Slovakia: A neglected zoonotic threat. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology, 29(1). doi: 10.1590/S1984-29612019072.

[14] Karvonen, A., Jokela, J., & Laine, A.-L. (2020). Importance of sequence and timing in parasite coinfections. Trends in Parasitology, 36(12), 109-118. doi: 10.1016/j.pt.2018.11.007.

[15] Koirala, S., Katuwal, H.B., Achami, B., & Shah, K.B. (2016). Parasites of Hodgson’s giant flying squirrel (Petaurista magnificus). International Journal of Advanced Research in Biological Sciences, 3(7), 8-13.

[16] Leblanc, M., Berry, K., Graciano, S., Becker, B., & Reuter, J.D. (2014). False-positive results after environmental pinworm PCR testing due to rhabditid nematodes in corncob bedding. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science, 53(6), 717-724.

[17] Lima, F.R., Rippel, L.B., Machado, S.G.R., Moraes, A.N., Rovaris, B.C., Moura, A.B., & Chtyssafidis, A.L. (2024). Successful treatment of Trypanoxyuris sp. infection in naturally infected southern brown howlers (Alouatta guariba clamitans). International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife, 24, article number 100956. doi: 10.1016/j.ijppaw.2024.100956.

[18] Lynnggaard, C., García-Prieto, L., Guzmán-Cornejo, C., & Osorio-Sarabia, D. (2020). Aspiculuris mexicana n. sp. (Nematoda: Heteroxynematidae) parasitising cricetid rodents from Mexico, with a taxonomic key for the genus. Revista Mexicana de Biodiversidad, 91, article number e912905. doi: 10.22201/ib.20078706e.2020.91.2905.

[19] Mathis, A., Mamidanna, P., Cury, K.M., Abe, T., Murthy, V.N., Mathis, M.W., & Bethge, M. (2018). DeepLabCut: Markerless pose estimation of user-defined body parts with deep learning. Nature Neuroscience, 21(9), 1281-1289. doi: 10.1038/s41593-018-0209-y.

[20] Ministry of Agriculture, Fisheries and Food. (1986). Manual of veterinary parasitological laboratory techniques (3rd ed.). London: H.M.S.O.

[21] Romeo, C., Ferrari, N., Lanfranchi, P., & Martinoli, A. (2021). Invading parasites: Spillover of an alien nematode reduces survival in a native species. Biological Invasions, 23(12), 3845-3856. doi: 10.1007/s10530-021-02611-7.

[22] Santicchia, F., Romeo, C., Ferrari, N., & Wauters, L.A. (2020). Spillover of an alien parasite reduces expression of costly behaviour in a native host species. Journal of Animal Ecology, 89(12), 2826-2837. doi: 10.1111/1365-2656.13219.

[23] World Health Organization. (2019). Bench aids for the diagnosis of intestinal parasites (2nd ed.). Geneva: World Health Organization.

[24] Yevstafieva, V.O., Prykhodko, Y.O., Kruchynenko, O.V., Mykhailiutenko, S.M., & Kone, M.S. (2020). Biological specifics of exogenous development of Oxyuris equi nematodes (Nematoda, Oxyuridae). Biosystems Diversity, 28(2), 125-130. doi: 10.15421/012017.

[25] Zilio, G., & Koella, J.C. (2020). Sequential co-infections drive parasite competition and the outcome of infection. The Journal of Animal Ecology, 89(10), 2367-2377. doi: 10.1111/1365-2656.13302.