Український часопис ветеринарних наук

Морфо-фізіологічні особливості ремодуляції ендометрія та яєчників корів за естрального циклу

Ірина Бондаренко, Айджан Мутлу Яганоглу, Андрій Лазоренко, Жанна Коренева, Валентин Карповський
Завантажити статтю
Анотація

Рентабельність молочного скотарства напряму залежить від інтенсифікації показників відтворення, що вимагає збільшення відсотку отримання телят на сто корів та оптимізації молочної продуктивності. З огляду на необхідність підвищення ефективності відтворення, метою досліджень було з’ясування морфо-фізіологічних змін яєчників та ендометрія корів протягом естрального циклу для подальшої розробки обґрунтованих методів корекції статевої циклічності. Аналіз гістологічних зразків виявив низку важливих змін. У фазу еструсу ендометрій демонструє максимальну набряклість і кровонаповнення артеріол, тоді як клітини функційного шару набувають децидуалоподібності за рахунок активного росту клітин строми. Численні маткові залози мають звивисту форму та розширені порожнини, наповнені секретом, при цьому епітеліальні клітини залоз стають багатоядерними з вакуолізацією через накопичення глікогену. В яєчниках реєструються первинні фолікули з кубічною формою фолікулярних клітин, що вказує на активні процеси реплікації та ремодуляції, оскільки кубовидні клітини діляться швидше, ніж плоскі. Протягом проеструсу покривний епітелій ендометрія стає хвилястим, а маткові залози, хоча й численні, містяться поруч із незначною кількістю клітин строми, не містять секрету та мають складчасту форму. Судинні зміни включають гіперплазію інтими артеріол зі звуженням просвіту та облітерацією тромботичних мас, що є початком запустіння судинних територій і ремодуляції сполучнотканинного матриксу. На цій фазі в яєчниках наявні третинні фолікули без ознак атрезії та жовті тіла на стадії розсмоктування. Фаза метеструсу характеризується утворенням великих, майже повністю структурованих жовтих тіл із великими ядрами лютеїнових клітин, тоді як жовті тіла попередніх циклів демонструють ознаки деградації. В ендометрії під час метеструсу одночасно наявні ознаки гормонозалежної десквамації й активної клітинної проліферації. Практична цінність дослідження полягає у створенні надійної морфологічної основи, яка детально розкриває механізм гормонозалежних змін, для розробки обґрунтованих протоколів діагностики та методів корекції гормонального статусу і статевої циклічності

Ключові слова

гістологічні зміни ендометрія; фолікули яєчника; яєчниковий резерв; жовті тіла; фізіологія статевого циклу

ЦИТУВАТИ
Bondarenko, I., Yaganoglu, A.M., Lazorenko, A., Koreneva, Zh., & Karpovskyi, V. (2025). Morpho-physiological features of endometrial and ovarian remodelling in cows during the oestrous cycle. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 16(3), 26-44. https://doi.org/10.31548/veterinary3.2025.26
Використані джерела

[1] Amin, Y.A., & Hussein, H.A. (2022). Latest update on predictive indicators, risk factors and “Omic” technologies research of retained placenta in dairy cattle – a review. Reproduction in Domestic Animals, 57, 687-700. doi: 10.1111/rda.14115.

[2] Amin, Y.A., Elnegiry А.А., Awadalla Е.А., Hussein, H.A., & Mohamed R.А. (2025). Placental expression of estrogen and progesterone receptors and vascular endothelial growth factor in buffaloes suffering from uterine torsion. BMC Veterinary Research, 21(1), article number 65. doi: 10.1186/s12917-024-04422-z.

[3] Ault-Seay, T.B., et al. (2022). Endometrial gene expression in response to lipopolysaccharide between estrous cycle phases and uterine horns in cattle. Frontiers in Animal Science, 3, article number 939876. doi: 10.3389/fanim.2022.939876.

[4] Diessler, M.E., Hernández, R., Gomez Castro, G., & Barbeito, C.G. (2023). Decidual cells and decidualization in the carnivoran endotheliochorial placenta. Frontiers in Cell and Developmental Biology, 11, article number e1134874. doi: 10.3389/fcell.2023.1134874.

[5] Hassan, S., et al. (2024). New insights in uterine involution and ovarian resumption in domestic animals. Acta Scientific Veterinary Sciences, 6(6), 10-16. doi: 10.31080/ASVS.2024.06.0880.

[6] Horalskyi, L.P., Khomych, V.T., & Kononskyi, O.I. (2015). Fundamentals of histological technique and morphofunctional research methods in normal and pathological conditions. Zhytomyr: Polissia.

[7] European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Research and Other Scientific Purposes. (1986, March). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/go/994_137.

[8] Ireland, J.L., Scheetz, D., Jimenez-Krassel, F., Themmen, A.P., Ward, F., Lonergan, P., Smith, G.W., Perez, G.I., Evans, A.C., & Ireland, J.J. (2008). Antral follicle count reliably predicts number of morphologically healthy oocytes and follicles in ovaries of young adult cattle. Biology of Reproduction, 79(6), 1219-1225. doi: 10.1095/biolreprod.108.071670.

[9] Kuru, M., Kuru, B.B., Kacar, C., Demir, M.C., & Cetin, N. (2022). Effect of oestrus synchronization with different lengths of progesterone-impregnated sponges and equine chorionic gonadotropin on reproductive efficiency in Romanov ewes during the non-breeding season. Acta Veterinaria Brno, 91(3), 243-250. doi: 10.2754/avb202291030243.

[10] Labarta, E., Sebastian-Leon, P., Devesa-Peiro, A., Celada, P., Vidal, C., Giles, J., Rodriguez-Varela, C., Bosch, E., & Diaz-Gimeno, P. (2021). Analysis of serum and endometrial progesterone in determining endometrial receptivity. Human Reproduction, 36(11), 2861-2870. doi: 10.1093/humrep/deab184.

[11] Lamanna, M., Bovo, M., & Cavallini, D. (2025). Wearable collar technologies for dairy cows: A systematized review of the current applications and future innovations in precision livestock farming. Animals, 15(3), article number 458. doi: 10.3390/ani15030458.

[12] Law of Ukraine No. 3447-IV “On the Protection of Animals from Cruelty”. (2006, February). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/3447-15#Text.

[13] Maculan, R., Vasconcelos, G.L., Viafara, J.A.S., Moreira, G.M., Vanin, C., Alves, N., Ferreira, M.B.D., & Souza, J.C. (2025). Beef cows with larger vulvar width have greater antral follicle count, viable oocytes, and higher circulating AMH. Animal Reproduction, 22(1), article number e20240077. doi: 10.1590/1984-3143-AR2024-0077.

[14] Muasa, B.S. (2010). Effects of follicle size and cumulus oocyte complex grade on in vitro embryo developmental competence for Boran cows. (Master’s thesis, University of Nairobi, Nairobi, Kenya).

[15] Nagy, B., Szekeres-Barthó, J., Kovács, G.L., Sulyok, E., Farkas, B., Várnagy, Á., Vértes, V., Kovács, K., & Bódis, J. (2021). Key to life: Physiological. role and clinical implications of progesterone. International Journal of Molecular Sciences, 22, article number 11039. doi: 10.3390/ijms222011039.

[16] Nanas, I., Barbagianni, M., Dadouli, K., Dovolou, E., & Amiridis, G.S. (2021). Ultrasonographic findings of the corpus luteum and the gravid uterus during heat stress in dairy cattle. Reproduction in Domestic Animals, 56(10), 1329-1341. doi: 10.1111/rda.13996.

[17] Noseir, W.M. (2003). Ovarian follicular activity and hormonal profile during estrous cycle in cows: The development of 2 versus 3 waves. Reproductive Biology and Endocrinology, 1, article number 50. doi: 10.1186/1477-7827-1-50.

[18] Order of the Ministry of Education and Science, Youth and Sports of Ukraine No. 249 “On Approval of the Procedure for Conducting Experiments on Animals by Scientific Institutions”. (2012, March). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/z0416-12#Text.

[19] Pavlenko, A., Kaart, T., Lidfors, L., Arney, D.R., & Aland, A. (2023). Changes in dairy cows’ behaviour, health, and production after transition from tied to loose housing. Acta Veterinaria Scandinavica, 65(1), article number 29. doi: 10.1186/s13028-023-00690-1.

[20] Pedersen, T., & Peters, H. (1968). Proposal for a classification of oocytes and follicles in the mouse ovary. Journal of Reproduction and Fertility, 17, 555-557. doi: 10.1530/jrf.0.0170555.

[21] Purpera, M.N., Giraldo, A.M., Ballard, C.B., Hylan, D., Godke, R.A., & Bondioli, K.R. (2009). Effects of culture medium and protein supplementation on mRNA expression of in vitro produced bovine embryos. Molecular Reproduction and Development, 76(8), 783-793. doi: 10.1002/mrd.21028.

[22] Rodgers, R.J., & Irving-Rodgers, H.F. (2010). Morphological classification of bovine ovarian follicles. Reproduction, 139(2), 309-318. doi: 10.1530/REP-09-0177.

[23] Ruiz-Magaña, M.J., Llorca, T., Martinez-Aguilar, R., Abadia-Molina, A.C., Ruiz-Ruiz, C., & Olivares, E.G. (2022). Stromal cells of the endometrium and decidua: In search of a name and an identity. Biology of Reproduction, 107, 1166-1176. doi: /10.1093/biolre/ioac158.

[24] Saini, P., Singh, M., & Kumar, P. (2019). Fungal endometritis in bovines. Open Veterinary Journal, 9(1), 94-98. doi: 10.4314/ovj.v9i1.16.

[25] Santos, J.B., Freitas, B.W., Obando, I.A.M., Oliveira, N.D., Penitente-Filho, J.M., Moreira, M.V.C., Lobato, A.N., & Guimarães, J.D. (2025). Reproductive traits and economic aspects on dairy cattle. Animal Reproduction, 22(1), article number e20240050. doi: 10.1590/1984-3143-AR2024-0050.

[26] Schultz, G.S., & Wysocki, A. (2009). Interactions between extracellular matrix and growth factors in wound healing. Wound Repair and Regeneration, 17(2), 153-162. doi: 10.1111/j.1524-475X.2009.00466.x.

[27] Sitko, S.F., Lopes, G., LeBlanc, S.J., Nydam, D.V., & Giordano, J.O. (2024). Reproductive physiological outcomes of dairy cows with different genomic merit for fertility: Biomarkers, uterine health, endocrine status, estrus features, and response to ovarian synchronization. Journal of Dairy Science, 107(1), 329-344. doi: 10.3168/jds.2023-24376.

[28] Sheldon, I.M., Lewis, G.S., LeBlanc, S., & Gilbert, R.O. (2006). Defining postpartum uterine disease in cattle. Theriogenology, 65(8), 1516-1530. doi: 10.1016/j.theriogenology.2005.08.021.

[29] Stevenson, J.S., & Pulley, S.L. (2016). Feedback effects of estradiol and progesterone on ovulation and fertility of dairy cows after gonadotropin-releasing hormone-induced release of luteinizing hormone. Journal of Dairy Science, 99(4), 3003-3015. doi: 10.3168/jds.2015-10091.

[30] Sugiura, T., Akiyoshi, S., Inoue, F., Yanagawa, Y., Moriyoshi M., Tajima, M., & Katagiri, S. (2018). Relationship between bovine endometrial thickness and plasma progesterone and estradiol concentrations in natural and induced estrus. Journal of Reproduction and Development, 64(2), 135-143. doi: 10.1262/jrd.2017-139.

[31] Taktaz, T., Kafi, M., Mokhtari, A., & Heidari, M. (2015). Reproductive responses of dairy cows with ovarian cysts to simultaneous human chorionic gonadotropin or gonadotropin-releasing hormone and cloprostenol compared to gonadotropin-releasing hormone alone treatment. Veterinary World, 8(5), 640-644. doi: 10.14202/vetworld.2015.640-644.

[32] Tuckerman, E., Mariee, N., Prakash, A., Li, T.C., & Laird, S. (2010). Uterine natural killer cells in peri-implantation endometrium from women with repeated implantation failure after IVF. Journal of Reproductive Immunology, 87(1-2), 60-66. doi: 10.1016/j.jri.2010.07.001.

[33] Wang, M.L., Liu, M.C., Xu, J., An, L.G., Wang, J.F., & Zhu, Y.H. (2018). Uterine microbiota of dairy cows with clinical and subclinical endometritis. Frontiers in Microbiology, 9, article number 2691. doi: 10.3389/fmicb.2018.02691.

[34] Yimer, N., Rosnina, Y., Wahid, H., Saharee, A.A., Yap, K.C., & Ganesamurthi, P. (2010). Ovarian activity in beef and dairy cows with prolonged postpartum period and heifers that fail to conceive. Tropical Animal Health and Production, 42(4), 607-615. doi: 10.1007/s11250-009-9464-y.

[35] Zargar, M., Ghafourian, M., Nikbakht, R., Mir Hosseini, V., & Moradi Choghakabodi, P. (2020). Evaluating chronic endometritis in women with recurrent implantation failure and recurrent pregnancy loss by hysteroscopy and immunohistochemistry. Journal of Minimally Invasive Gynecology, 27(1), 116-121. doi: 10.1016/j.jmig.2019.02.016.

[36] Zhou, A.G., Levinson, K.L., Rosenthal, D.L., & Vanden Bussche, C.J. (2018). Performance of ovarian cyst fluid fine-needle aspiration cytology. Cancer Cytopathology, 126(2), 112-121. doi: 10.1002/cncy.21911.