Закономірності формування лімфоїдної тканини стравохідного мигдалика в качок на ранніх етапах постнатального періоду онтогенезу

Світлана Усенко*, Тетяна Мазуркевич, Пьотр Куропка, Жанна Стегней

ivusvit@ukr.net

Анотація

Актуальність дослідження стравохідного мигдалика качок на ранніх етапах постнатального періоду онтогенезу зумовлена необхідністю проведення аналізу становлення рівнів структурної організації його лімфоїдної тканини. У зв’язку з цим, метою дослідження було виявлення локалізації та форми лімфоїдної тканини стравохідного мигдалика бройлерних качок Благоварського кросу віком від 1 до 240 діб. Проводили морфометричні дослідження та визначали топографію стравохідного мигдалика у качок досліджуваних вікових груп. Фіксацію біологічного матеріалу проводили у 10 % розчині нейтрального формаліну. При проведені гістологічних досліджень виготовляли парафінові блоки на санному мікротомі та отримували гістозрізи, які зафарбовували для виявлення особливостей структури і площі тканинних компонентів стравохідного мигдалика. Встановлено, що стравохідний мигдалик у качок макроскопічно візуалізувався в ділянці переходу слизової оболонки каудальної частини стравоходу в залозисту частину шлунку. Зміни його довжини і ширини характеризувались асинхронністю. Лімфоїдна тканина стравохідного мигдалика до 5-добового віку качок представлена лише дифузною формою. У птахів віком 10 і більше діб з’являлися первинні і вторинні вузлики. На 15 добу стравохідний мигдалик набував морфофункціональної зрілості та характеризувався повністю сформованою лімфоїдною тканиною. У добових качок встановили інфільтрацію лімфоцитами залозистих відділів стравохідних залоз та вивідних проток. З віком спостерігалося інтенсивне заселення лімфоїдними клітинами епітелію стравохідних залоз та вивідних проток. У результаті просвіти залоз звужувалися та перетворювалися на криптоподібні отвори, що відкриваються в просвіт стравоходу. Отримані дані щодо розвитку лімфоїдної тканини стравохідного мигдалика у бройлерних качок у початкові вікові фази можуть бути використані для оптимізації процесів вирощування, підвищення продуктивних показників і вдосконалення стратегій вакцинації з метою запобігання небезпечним інфекційним хворобам

Ключові слова

імунні утворення; лімфоїдні вузлики; морфометричні дослідження; свійська птиця; слизова оболонка стравоходу

ЦИТУВАТИ
Usenko, S., Mazurkevych, T., Kuropka, P., & Stegney, Zh. (2026). Patterns of formation of the lymphoid tissue of the oesophageal tonsil in ducks at the early stages of the postnatal period of ontogenesis. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 17(1), 11-30. https://doi.org/10.31548/veterinary1.2026.11
Використані джерела
  1. Akhand, A.A., & Ahsan, N. (2023). Cells and organs of the immune system. In M.T. Rahman, W. Teughels & J.R. Lamont (Eds.), Immunology for dentistry (pp. 1-12). Hoboken: John Wiley & Sons. doi: 10.1002/9781119893035.ch1.
  2. Ali, H.M., Ali, K.A., & Taha, A.M. (2023). Comparative anatomical, histological, and electron microscopical studies on the cervical region of the esophagus in some birds with different diet habits. Journal of Advanced Veterinary Research, 13(2), 181-187.
  3. ARRIVE. (n.d.). ARRIVE guidelines. Retrieved from https://arriveguidelines.org.
  4. Buhai, L.O. (2008). Peculiarities of the dynamics of macro-microscopic parameters of the esophageal spongy tissue of musk ducks in early postnatal ontogenesis. Naukovyi Visnyk Lvivskoho Natsionalnoho Universytetu Veterynarnoi Medytsyny ta Biotekhnolohii Imeni S.Z. Gzhytskoho, 2(37), 16-20.
  5. Capotă, R., Bostănaru-Iliescu, A.C., Ciaușu-Sliwa, D., & Năstasă, V. (2025). Insights into the avian immune system. Romanian Journal of Veterinary Sciences, 58(3), 454-462. doi: 10.59463/rjvs.2025.3.13.
  6. Casteleyn, C., Doom, M., Lambrechts, E., van den Broeck, W., Simoens, P., & Cornillie, P. (2010). Locations of gut-associated lymphoid tissue in the 3-month-old chicken: A review. Avian Pathology, 39(3), 143-150. doi: 10.1080/03079451003786105.
  7. Ceccopieri, C., & Madej, J.P. (2024). Chicken secondary lymphoid tissues – structure and relevance in immunological research. Animals, 14(16), article number 2439. doi: 10.3390/ani14162439.
  8. Davison, F. (2022). The importance of the avian immune system and its unique features. In B. Kaspers, K.A. Schat, T.W. Göbel & L. Vervelde (Eds.), Avian immunology (pp. 1-9). New York: Academic Press. doi: 10.1016/B978-0-12-818708-1.00010-5.
  9. Donmez, H.H., Eken, E., Besoluk, K., & Sur, E. (2012). The histological characteristics and localization of ACP and ANAE positive lymphocytes in the oesophageal tonsil of the duck (Anas platyrhynchos). Avian Biology Research, 5(1), 11-15. doi: 10.3184/175815512X13264771062961.
  10. DSTU EN ISO 13385-1:2018. (2018). Technical requirements for geometric product parameters (GPS). Linear and angular measuring instruments. Part 1: Calipers. Design and metrological characteristics. Retrieved from https://online.budstandart.com/ua/catalog/doc-page.html?id_doc=80498.
  11. Dyshliuk, N.V. (2009). Development of the striated mycosis of chickens in the postnatal period of ontogenesis. Bulletin of Dnipropetrovsk State Agricultural University, 1, 115-118.
  12. El-Naseery, N.I., Mohammed, A.A., Abuel-Atta, A.A., & Ghonimi, W.A.M. (2021). Species-specific differences of the avian oesophagus: Histological and ultrastructural study. Anatomia, Histologia, Embryologia, 50(5), 788-800. doi: 10.1111/ahe.12721.
  13. OIE/WOAH. (n.d.). Standarts. Retrieved from https://www.woah.org/en/what-we-do/standards.
  14. Friedman, A., Elad, O., Cohen, I., & Bar Shira, E. (2012). The gut associated lymphoid system in the post-hatch chick: Dynamics of maternal IgA. Israel Journal of Veterinary Medicine, 67(2), 75-81.
  15. Guralska, S., Kot, T., Gryshuk, H., Zaika, S., & Dubovyi, A. (2023). Effect of chicken infectious bronchitis vaccine on morphogenesis and differentiation of cells in caecal tonsils. Scientific Horizons, 26(6), 9-21. doi: 10.48077/scihor6.2023.09.
  16. Hantusch, B. (2024). Morphological and functional characteristics of blood and lymphatic vessels. In M. Geiger (Ed.), Fundamentals of vascular biology. Learning materials in biosciences (pp. 1-50). Cham: Springer. doi: 10.1007/978-3-031-64591-4_1.
  17. Horalskyi, L.P., Khomych, V.T., & Kononskyi, O.I. (2015). Fundamentals of histological techniques and morphofunctional methods of studies in norm and pathology. Zhytomyr: Polissia.
  18. Indu, V.R., & Lucy, K.M. (2021). Histology and histochemistry of the oesophageal tonsils in White Leghorn chicken. International Journal of Current Microbiology and Appied Sciences,10(6), 304-308. doi: 10.20546/ijcmas.2021.1006.032.
  19. Indu, V.R., Biju, S., Lucy, K.M., & Maya, S. (2020). Histological studies on the oesophageal tonsils of broiler ducks. Journal of Food and Animal Sciences, 1(1), 53-56. doi: 10.51128/jfas.2020.A010.
  20. Jamil, A., Hameed, I., Rizwan, M.U., Fiaz, M., Usmani, M.T., & Shoaib, M. (2024). Avian immune system unveiled: A comprehensive prospective. THE PROGRESS: A Journal of Multidisciplinary Studies, 5(4), 51-64. doi: 10.71016/tp/3d3njw68.
  21. Kadirova, L.V. (2024). Morphofunctional features of intestinal-associated lymphoid tissue. International Journal of Integrative and Modern Medicine, 2(6), 522-526.
  22. Khomych, V.T., & Usenko S.I. (2013). Morphology of the ostrich egg of ducks aged 25 to 120 days. Scientific Bulletin of the National University of Bioresources and Natural Resources of Ukraine. Series: Veterinary Medicine, Quality and Safety of Animal Production, 188(2), 193-197.
  23. Khomych, V.T., & Usenko, S.I. (2012). Morphofunctional features of the ostrich feathered crest of ducks in the early stages of the postnatal period of ontogenesis. Bulletin of Zhytomyr National Agroecological University, 3(2), 412-415.
  24. Law of Ukraine No. 3447-IV “On the Protection of Animals from Cruelty”. (2006, February). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/go/3447-15.
  25. Lestari, D., Murtini, S., Ulupi, N., Gunawan, A., & Sumantri, C. (2023). Flow cytometric evaluation of CD4+ and CD8+ T-cell in IPB-D2 chickens with different Newcastle disease antibody titers level. Veterinary World, 16(5), 1161-1164. doi: 10.14202/vetworld.2023.1161-1164.
  26. Logvinova, V., & Oliyar, A. (2021). Histoarchitectonics of lymphoid formations of the mucosa of the small intestine of muscy ducks. Bulletin of Sumy National Agrarian University, 1(52), 31-37. doi: 10.32845/bsnau.vet.2021.1.5.
  27. Mazur, N., & Dyshliuk, N. (2025). Morphological features of immune formations of the avian digestive tract. Scientific Reports of the National University of Life and Environmental Sciences of Ukraine, 21(5), 28-42. doi: 10.31548/dopovidi/5.2025.28.
  28. Mazurkevych, T., & Khomych, V. (2017). Location features of lymphoid tissue in immune formations of the intestine, meckel’s diverticulum and apical diverticula walls in ducks. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. Series: Veterinary Sciences, 19(82), 30-35. doi: 10.15421/nvlvet8207.
  29. Mehrzad, J., Shojaei, S., Keivan, F., Forouzanpour, D., Sepahvand, H., Kordi, A., & Hooshmand, P. (2024). Avian innate and adaptive immune components: A comprehensive review. Journal of Poultry Sciences and Avian Diseases, 2(3), 73-96. doi: 10.61838/kman.jpsad.2.3.7.
  30. Nagy, N., Igyárto, B., Magyar, A., Gazdag, E., Palya, V., & Oláh, I. (2005). Oesophageal tonsil of the chicken. Acta Veterinaria Hungarica, 53(2), 173-188. doi: 10.1556/AVet.53.2005.2.3.
  31. Oláh, I., Nagy, N., Magyar, A., & Palya, V. (2003). Esophageal tonsil: A novel gut-associated lymphoid organ. Poultry Science, 82(5), 767-770. doi: 10.1093/ps/82.5.767.
  32. Park, J.I., Cho, S.W., Kang, J.H., & Park, T.E. (2023). Intestinal Peyer’s patches: Structure, function, and in vitro modeling. Tissue Engineering and Regenerative Medicine, 20(3), 341-353. doi: 10.1007/s13770-023-00543-y.
  33. Pendl, H., & Schmidt, R.E. (2024). Lymphatic and hematopoietic system. In R.E. Schmidt, J.D. Struthers & D.N. Phalen (Eds.), Pathology of pet and aviary birds (pp. 307-341). Hoboken: John Wiley & Sons. doi: 10.1002/9781119650522.ch9.
  34. Reznikov, O.H. (2003). General ethical principles of experiments on animals. The first National congress on bioethics. Endocrinology, 8(1), 142-145.
  35. Rochman, M., Kellerman, K., Jankowski, M.P., & Rothenberg, M.E. (2025). The oesophagus as an immune organ. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology, 22, 657-667. doi: 10.1038/s41575-025-01086-4.
  36. Tizard, I.R. (2024). Veterinary immunology-E-book (11th ed.). Amsterdam: Elsevier Health Sciences.
  37. Yıldırım, N. (2024). Histochemical and immunohistochemical investigations on pyloric tonsil in Turkeys (Meleagris gallopavo). Ankara University Faculty of Veterinary Medicine Journal, 71(3), 259-267. doi: 10.33988/auvfd.1242236.
  38. Zeinali, S., Sutton, K., & Vervelde, L. (2024). Distribution and spatiotemporal development of organised lymphoid tissues in the chicken intestinal tract. Developmental & Comparative Immunology, 151, article number 105096. doi: 10.1016/j.dci.2023.105096.