Використання біотехнологічних методів відтворення є актуальним питанням, оскільки трансплантація ембріонів, отриманих після стимулювання суперовуляції, здатна прискорити відтворення та поліпшити поголів’я великої рогатої худоби. Метою роботи було оцінити ефективність різних схем стимуляції суперовуляції в корів української чорно-рябої молочної породи. При цьому, в роботі вивчали реакцію яєчників на препарат «ФСГ-супер» за різних схем введення Step-up (поступове підвищення дози) та Step-down (поступове зменшення дози) і реєстрували кількість ембріонів придатних до трансплантації. Для синхронізації статевого циклу коровам-донорам вводили препарат «Естрофан». Через 7 діб ін’єктували препарат «Оварелін», а ще через 7 діб повторювали ін’єкцію препарату «Естрофан» у тій же дозі. Стимуляцію суперовуляції розпочинали на 10 добу статевого циклу за допомогою препарату «ФСГ-супер» у вигляді восьми поступово зростаючих (Step-up) і поступово спадаючих (Step-down) доз упродовж 4 діб. Штучне осіменіння проводили через 12 і 24 год від початку охоти. Під час дослідження було встановлено, що в групі корів з поступовим зменшенням доз препарату «ФСГ-супер» зреагували суперовуляцією 83,3%, а в групі з поступовим їх підвищенням лише 71,4%. Водночас кількість жовтих тіл на двох яєчниках у корови-донора в середньому становить 15,6 і 9,2, відповідно. Від донора у середньому отримано 12,4 і 7,8 ембріонів (Step-down та Step-up), із них придатних до трансплантації 7,8 і 4,2, відповідно. Проте, в групі корів з поступово спадаючими дозами отримано більшу кількість непридатних до трансплантації ембріонів – 4,6 і незапліднених яйцеклітин – 2,6, порівняно з групою донорів, яким застосовували поступове підвищення доз, де ці показники становлять 3,6 і 1,0, відповідно. Таким чином, використання коровам-донорам препарату «ФСГ-супер» за схемою введення Step-down дає можливість отримати більшу кількість придатних до трансплантації ембріонів. Це дозволить управляти біотехнологічними аспектами відтворення великої рогатої худоби та ефективно й контрольовано пришвидшити селекційний процес у господарствах різних форм власності, закріплюючи у стаді бажаний генотип
ФСГ-супер, велика рогата худоба, фолікул, Step-up, Step-down
[1] Capper, J.L. (2011). The environmental impact of beef production in the United States: 1977 compared with 2007. Journal of Animal Science, 89(12), 4249-4261. doi: 10.2527/jas.2010-3784.
[2] Thorne, W.J. (2013). Fertility of beef recipients following a fixed-time embryo transfer protocol that includes follicle stimulating hormone diluted in hyaluronan (Masters thesis, Texas A&M University, Texas, United States).
[3] Hasler, J.F. (2012). Bovine embryo transfer: Are efficiencies improving? In Proceedings, applied reproductive strategies in beef cattle (pp. 319-338). Sioux Falls, South Dakota.
[4] Hasler, J.F. (2014). Forty years of embryo transfer in cattle: A review focusing on the journal Theriogenology, the growth of the industry in North America, and personal reminisces. Theriogenology, 81(1), 152-169. doi: 10.1016/j.theriogenology.2013.09.010.
[5] Mikkola, M. (2017). Superovulation and embryo transfer in dairy cattle: Effect of management factors with emphasis on sex-sorted semen (Doctoral thesis, University of Helsinki, Helsinki, Finland). Retrieved from http://urn.fi/ URN:ISBN:978-951-51-3123-2.
[6] Smith, C. (1988). Application of embryo transfer in animals breeding. Teriogenology, 29(1), 203-212. doi: 10.1016/0093-691x(88)90040-4.
[7] Report of the International Society for Embryo Transplantation. (2018). Retrieved from https://www.iets.org/ Portals/0/Documents/Public/Committees/DRC/IETS_Data_Retrieval_Report_2018.pdf.
[8] Statistics of the Association of Embryo Technologies in Europe for 2018. (2018). Retrieved from https://www.aete.eu/ app/download/13054329831/AETE+Statistics+year+2018.pdf?t=1629383203.
[9] Perry, G. (2018). Data Retrieval Committee Reports; 2016 statistics of embryo collection and transfer in domestic farm animals. International Embryo Technology Society (IETS), 2, 1-23. doi: 10.13140/RG.2.2.24793.42087.
[10] Hasler, J. (2010). Bovine embryo transfer: Are efficiencies improving? Proceedings Applied Reproductive Strategies. Bioniche Animal Health, 1, 1-18. Retrieved from https://beefrepro.org/wp-content/uploads/2020/09/ ARSBC12_25HaslerSlides.pptx.pdf.
[11] Bó, G.A., & Mapletoft, R.J. (2014). Historical perspectives and recent research on superovulation in cattle. Theriogenology, 81(1), 38-48. doi: 10.1016/j.theriogenology.2013.09.020.
[12] Escobar, C.J. (2018). Embryo transfer, a potential risk in disease transmission. MOJ Anatomy & Physiology, 5(4), 259-262. doi: 10.15406/mojap.2018.05.00205.
[13] Guerreiro, B.M., Batista, E.O., Vieira, L.M., Sá Filho, M.F., Rodrigues, C.A., Castro Netto, A., Silveira, C.R., Bayeux, B.M., Dias, E.A., Monteiro, F.M., Accorsi, M., Lopes, R.N., & Baruselli, P.S. (2014). Plasma anti-mullerian hormone: An endocrine marker for in vitro embryo production from Bos taurus and Bos indicus donors. Domestic Animal Endocrinology, 49, 96-104. doi: 10.1016/j.domaniend.2014.07.002.
[14] Rigoglio, N.N., Fátima, L.A., Hanassaka, J.Y., Pinto, G.L., Machado, A.S., Gimenes, L.U., Baruselli, P.S., Rennó, F.P., Moura, C.E., Watanabe, I.S., & Papa, P.C. (2013). Equine chorionic gonadotropin alters luteal cell morphologic features related to progesterone synthesis. Theriogenology, 79(4), 673-679. doi: 10.1016/j.theriogenology.2012.11.023.
[15] Deguettes, Q., Fattal, E., Moreau, M., Lego, E., & Bochot, A. (2020). Controlled delivery of follicle-stimulating hormone in cattle. International Journal of Pharmaceutics, 590, article number 119904. doi: 10.1016/j.ijpharm.2020.119904.
[16] Moore, S.G., & Hasler, J.F. (2017). A 100-year review: Reproductive technologies in dairy science. Journal of Dairy Science, 100(12), 10314-10331. doi: 10.3168/jds.2017-13138.
[17] Chankitisakul, V., Pitchayapipatkul, J., Chuawongboon, P., Rakwongrit, D., Sakhong, D., Boonkum, W., & Vongpralub, T. (2017). Comparison of three superovulation protocols with or without GnRH treatment at the time of artificial insemination on ovarian response and embryo quality in Thai native heifers. Tropical Animal Health and Production, 49(3), 633-639. doi: 10.1007/s11250-017-1243-6.
[18] Ostashko, F.I. (1995). Biotechnology of cattle reproduction. Kyiv: Agrarian Science.
[19] García Guerra, A., Tribulo, A., Yapura, J., Singh, J., & Mapletoft, R.J. (2012). Lengthening the superstimulatory treatment protocol increases ovarian response and number of transferable embryos in beef cows. Theriogenology, 78(2), 353-360. doi: 10.1016/j.theriogenology.2012.02.010.
[20] Gutiérrez-Reinoso, M., Aguilera, C., Navarrete, F., Cabezas, J., Castro, F., Cabezas, I., Sánchez, O., Rodríguez-Alvarez, L., & Garcia-Herreros, M. (2021). 163 Superovulation efficiency by using different FSH-derived protocols in cattle: Bovine medium-acting recombinant FSH versus conventional FSH. Reproduction, Fertility, and Development, 34(2), 319-320. doi: 10.1071/rdv34n2ab163.
[21] Macklon, N.S., Stouffer, R.L., Giudice, L.C., & Fauser, B.C. (2006). The science behind 25 years of ovarian stimulation for in vitro fertilization. Endocrine Reviews, 27, 170-207. doi: 10.1210/er.2005-0015.
[22] European Convention for the Protection of VertebrateAnimals Used for Research and Other Scientific Purposes. (1986, March). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/go/994_137.
[23] Law of Ukraine No. 3447-IV “On the Protection of Animals from Cruelty”. (2006, February). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/go/3447-15.
[24] IETS. (1998). Manual of the international embryo transfer society (3rd ed.). Retrieved from https://www.iets.org/ Publications/IETS-Manual.
[25] Jimenez-Krassel, F., Scheetz, D.M., Neuder, L.M., Ireland, J.L., Pursley, J.R., Smith, G.W., Tempelman, R.J., Ferris, T., Roudebush, W.E., Mossa, F., Lonergan, P., Evans, A.C., & Ireland, J.J. (2015). Concentration of anti-Müllerian hormone in dairy heifers is positively associated with productive herd life. Journal of Dairy Science, 98(5), 3036-3045. doi: 10.3168/jds.2014-8130.
[26] Chebel, R.C., Demétrio, D.G., & Metzger, J. (2008). Factors affecting success of embryo collection and transfer in large dairy herds. Theriogenology, 69(1), 98-106. doi: 10.1016/j.theriogenology.2007.09.008.
[27] Drillich, M., Tesfaye, D., Rings, F., Schellander, K., Heuwieser, W., & Hoelker, M. (2012). Effects of polymorphonuclear neutrophile infiltration into the endometrial environment on embryonic development in superovulated cows. Theriogenology, 77(3), 570-578. doi: 10.1016/j.theriogenology.2011.08.033.
[28] Vieira, L.M., Rodrigues, C.A., Castro Netto, A., Guerreiro, B.M., Silveira, C.R., Moreira, R.J., Sá Filho, M.F., Bó, G.A., Mapletoft, R.J., & Baruselli, P.S. (2014). Superstimulation prior to the ovum pick-up to improve in vitro embryo production in lactating and non-lactating Holstein cows. Theriogenology, 82(2), 318-324. doi: 10.1016/j.theriogenology. 2014.04.013.
[29] Betteridge, K.J. (2006). Farm animal embryo technologies: Achievements and perspectives. Theriogenology, 65(5), 905-913. doi: 10.1016/j.theriogenology.2005.09.005.
[30] Kohram, H., & Poorhamdollah, M. (2012). Relationships between the ovarian status and superovulatory responses in dairy cattle. Animal Reproduction Science, 131(3-4), 123-128. doi: 10.1016/j.anireprosci.2012.03.004.
[31] Peippo, J., Vartia, K., Kananen-Anttila, K., Räty, M., Korhonen, K., & Hurme, T. (2009). Embryo production from superovulated Holstein-Friesian dairy heifers and cows after insemination with frozen-thawed sex sorted X spermatozoa or unsorted semen. Animal Reproduction Science, 111, 80-92.