Український часопис ветеринарних наук

Мікроморфометрична характеристика надниркової залози птахів

Тетяна Францівна Кот, Владислав Сергійович Прокопенко
Завантажити статтю
Анотація

Надниркова залоза – периферичний орган ендокринної системи, який має безпосередній вплив на формування показників продуктивності птахів, що є важливою характеристикою для розвитку промислового птахівництва. Мета роботи полягала у проведенні морфометричної оцінки мікроструктурних компонентів надниркової залози птахів ряду Куроподібні (свійські перепел, курка, індик), Гусеподібні (індокачка, свійські качка і гуска) та Голубоподібні (голуб сизий). Використано анатомічні, гістологічні, морфометричні та статистичні методи досліджень. Встановлено, що товщина капсули надниркової залози птахів прямо залежить від маси їх тіла і варіює від 10,82 ± 0,56 мкм (свійський перепел) до 28,53 ± 1,36 мкм (свійський індик). Інтерреналова тканина порівняно з супрареналовою тканиною в індокачки, голуба сизого, свійських качки і гуски займає більшу (Р < 0,001) площу центральної зони (відповідно в 3,50, 2,77, 3,10 і 3,11 раза) і периферичної зони (відповідно в 1,27, 2,71, 1,38 і 1,55 раза) надниркової залози, що свідчить про її морфофункціональну активність. Площа венозних синусів у центральній зоні порівняно з периферичною зоною надниркової залози більша у свійського перепела – в 2,80 раза (Р < 0,05), свійської курки – в 3,62 раза (Р < 0,05), свійського індика в 3,68 раза (Р < 0,05), індокачки в 5 разів (Р < 0,01), свійської качки в 3 рази (Р < 0,05), свійської гуски в 2 рази (Р < 0,05). Для голуба сизого характерне рівномірне розміщення венозних синусів по всій периферії надниркової залози і як наслідок близькі за значенням показники їх площі у периферичній та центральній зонах. Показник ядерно-цитоплазматичного відношення ендокриноцитів надниркової залози птахів різниться, зокрема найменший він у клітинах другого типу інтерреналової тканини (від 0,052 ± 0,004 у голуба сизого до 0,092 ± 0,016 у свійського перепела), дещо більший – у клітинах першого типу інтерреналової тканини (від 0,065 ± 0,004 у голуба сизого до 0,111 ± 0,012 у свійського індика) і найбільший – у хромафінних клітинах супрарналової тканини (від 0,102 ± 0,015 у свійської курки до 0,166 ± 0,018 у голуба сизого). Встановлені особливості морфометричних показників мікроструктурних компонентів надниркової залози птахів рекомендовано використовувати для створення бази її нормальної морфологічної характеристики. Це дасть можливість робити оцінку морфо-функціонального стану надниркової залози в умовах впливу різних факторів і за патології

Ключові слова

зони надниркової залози, інтерреналова і супрареналова тканини, венозні синуси, ендокриноцити, ядерно-цитоплазматичне відношення

ЦИТУВАТИ
Kot, T., & Prokopenko, V. (2022). Micromorphometric characteristics of the adrenal gland in birds. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 13(4), 25-34. https://doi.org/10.31548/ujvs.13(4).2022.25-34
Використані джерела

[1] Bancroft, J., & Gamble, M. (2007). Theory and practice of histology techniques. London: Churchil Livingstone.

[2] Banerjee, M., Ghosh, S., & Chakrabarti, P. (2018). Cytology of the pituitary gonadotrophs, histological characteristics of interrenal and chromaffin cells in relation to testicular activities in Mystus Vittatus (Siluriformes, Bagridae) during growth, maturation and spawning phases. Vestnik Zoologii, 52(2), 155-164. doi: 10.2478/vzoo-2018-0017.

[3] Batool, F., Khan, H., & Saif ur Rehman, M. (2020). Feeding ecology of blue rock pigeon (Columba livia) in the three districts of Punjab, Pakistan. Brazillian Journal of Biology, 80(4), 881-890. doi: 10.1590/1519-6984.225451.

[4] Brooks Brownlie, H.W., & Munro, R. (2016). The veterinary forensic necropsy: A review of procedures and protocols. Veterinary Pathology, 53(5), 919-928. doi: 10.1177/0300985816655851.

[5] Colcimen, N., & Cakmak, G. (2020). A stereological study of the renal and adrenal glandular structure of red-legged partridge (Alectoris chukar). Folia Morphologica, 80(1), 210-214. doi: 10.5603/FM.a2020.0010.

[6] Di Lorenzo, M., Barra, T., Rosati, L., Valiante, S., Capaldo, A., De Falco, M., & Laforgia, V. (2020). Adrenal gland response to endocrine disrupting chemicals in fishes, amphibians and reptiles: A comparative overview. General and Comparative Endocrinology, 297, article number 113550. doi: 10.1016/j.ygcen.2020.113550.

[7] Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. (2010). Official Journal of the European Union, 276, 33-77.

[8] Domyan, E.T., & Shapiro, M.D. (2017). Pigeonetics takes fight: Evolution, development, and genetics of intraspecific variation. Developmental Biology, 427(2), 241-250. doi: 10.1016/j.ydbio.2016.11.008.

[9] El-Desoky, S.M.M., & El-Zahraa, F.A.M. (2021). Morphological and histological studies of the adrenal gland in the Japanese quail (Coturnix japonica). Microscopy Research and Technique, 84(10), 2361-2371. doi: 10.1002/jemt.23791.

[10] Erdem, E., Ozbaser, F., Gurcan, E., & Soysa, M. (2021). The morphological and morphometric characteristics of Alabadem pigeons. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences, 45(2), 372-379. doi: 10.3906/vet-2005-58.

[11] Fathima, R., & Lucy, K. (2014). Morphological studies on the adrenal gland of kuttanad ducks (Anas platyrhynchos domesticus) during post hatch period. Journal of Agriculture and Veterinary Science, 7(6), 58-62. doi: 10.9790/2380-07635862.

[12] Gaber, W., & Abdel-maksoud, F.M. (2019). Interrenal tissue, chromaffin cells and corpuscles of Stannius of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Microscopy, 68(3), 195-206. doi: 10.1093/jmicro/dfy146.

[13] Gjuen, J., & Jensen, P. (2022). Selection for reduced fear of humans changes intra-specific social behavior in red junglefowl-implications for chicken domestication. Genes, 13(1), article number 43. doi: 10.3390/genes13010043.

[14] Grymak, Y., Skoromna, O., Stadnytska, O., Sobolev, O., Gutyj, B., Shalovylo, S., Hachak, Y., Grabovska, O., Bushueva, I., Denys,  G., Hudyma, V., Pakholkiv, N., Jarochovich, I., Nahirniak, T., Pavliv, O., Farionik, Т., & Bratyuk, V. (2020). Influence of “Thireomagnile” and “Thyrioton” preparations on the antioxidant status of pregnant cows. Ukrainian Journal of Ecology, 10(1), 122-126. doi: 10.15421/2020_19.

[15] Gyorfy, M.F., Miller, E.R., Conover, J.L., Grover, C.E., Wendel, J.F., Sloan, D.B., & Sharbrough, J. (2021). Nuclearcytoplasmic balance: Whole genome duplications induce elevated organellar genome copy number. The Plant Journal, 108(1), 219-230. doi: 10.1111/tpj.15436.

[16] Hafez, M., & Attia, Y. (2020). Challenges to the poultry industry: Current perspectives and strategic future after the COVID-19 outbreak. Frontiers in Veterinary Science, 7, 1-16. doi: 10.3389/fvets.2020.00516.

[17] Kigata, T., & Shibata, H. (2018). Arterial supply to the rabbit adrenal gland. Anatomical Science International, 93(4), 437-448. doi: 10.1007/s12565-018-0433-2.

[18] Kober, H., Masato, A., & Shoei, S. (2012). Morphological and Histological Studies on the Adrenal Gland of the Chicken (Gallus domesticus). Journal of Poultry Science, 49(1), 39-45. doi: 10.2141/jpsa.011038.

[19] Kot, T., Rudik, O., Guralska, S., Zaika, S., & Khomenko, Z. (2021). Study of adrenal morphology fromantiquity to the present day. Scientific Messenger of Lviv National University of Veterinary Medicine and Biotechnologies, 101(23), 75-81. doi: 10.32718/nvlvet10113.

[20] Law of Ukraine No. 3447-IV “On the Protection of Animals from Cruelty” (2006, February). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/en/3447-15.

[21] Lees, A.C., Haskell, L., Allinson, T., Bezeng, S.B., Burfield, I.J., Renjifo, L.M., Rosenberg, K.V., Viswanathan, A., & Butchart, S.H.M. (2022). State of the world’s birds. Annual Review of Environment and Resources, 47, 231-260. doi: 10.1146/annurev-environ-112420-014642.

[22] Lotfi, C.F.P, Kremer, J.L., Passaia, B.S., & Cavalcante, I.P. (2018). The human adrenal cortex: Growth control and disorders. Clinics, 73(1), 1-14. doi: 10.6061/clinics/2018/e473s.

[23] Lotveld, P., Fallahshahroudi, A., Bektic, L., Altimiras, J., & Jensen, P. (2017). Chicken domestication changes expression of stress-related genes in brain. pituitary and adrenals. Neurobiology of Stress, 7, 113-121. doi: 10.1016/j.ynstr.2017.08.002.

[24] Matos, R. (2008). Adrenal steroid metabolism in birds: Anatomy, physiology, and clinical considerations. Veterinary Clinics of North America: Exotic Animal Practice, 11(1), 35-57. doi: 10.1016/j.cvex.2007.09.006.

[25] Moawad, U., & Hassan, M.R. (2017). Histocytological and histochemical features of the adrenal gland of Adult Egyptian native breeds of chicken (Gallus Gallus domesticus). Journal of Basic and Applied Sciences, 6(2), 199-208. doi: 10.1016/j.bjbas.2017.04.001.

[26] Moghadam, D.P., & Mohammadpour, A. (2017). Histomorphological and stereological study on the adrenal glands of adult female guinea fowl (Numida meleagris). Comparative Clinical Pathology, 26(3), 1227-1231. doi: 10.1007/s00580-017-2514-3.

[27] Mulisch, M., & Welsch, U. (2015). Romeis – Mikroskopische technik. Heidelberg: Spektrum Akademischer Verlag. doi: 10.1007/978-3-642-55190-1.

[28] OECD-FAO Agricultural Outlook 2016-2025. (2016). Paris: OECD Publishing. doi: 10.1787/agr_outlook-2016-en.

[29] OECD-FAO Agricultural Outlook 2019-2028. (2019). Paris: OECD Publishing. doi:10.1787/agr_outlook-2019-en.

[30] Prokopenko, V.S., & Kot, T.F. (2021). Features of the microscopic structure of the adrenal gland of geese. Scientific Messenger of Lviv National University of Veterinary Medicine and Biotechnologies, 103(23), 10-14. doi: 10.32718/nvlvet10302.

[31] Prokopenko, V.S., & Kot, T.F. (2021). Macroscopic characteristics of the avian adrenal gland. Bulletin of Sumy National Agrarian University, 4(55), 17-23. doi: 10.32845/bsnau.vet.2021.4.3.

[32] Qureshi, S., Khan, M.N., Shafi, S., Mir, M.S., Adil, S., & Khan, A. (2020). A study on histomorphology of adrenal gland in broiler chickens subjected to cold stress and its ameliorating remedies. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 9(4), 1160-1168. doi: 10.20546/ijcmas.2020.904.137.

[33] Reavill, D., & Schmidt, R. (2019). Post-mortem examination. In BSAVA Manual of backyard poultry medicine and surgery. (pp. 291-308). doi: 10.22233/9781910443194.25.

[34] Rudik, O., Kot, T., Guralska, S., Dovhiy, Y., & Zhytova, O. (2021). Micropathology of the internal organs of Japanese quails naturally infected with Eimeria tenella. Journal of World’s Poultry Research, 11(3), 322-331. doi: 10.36380/jwpr.2021.38.

[35] Scanes, C.G. (2015). Avian endocrine system. In Sturkie’s Avian Physiology (pp. 489-496). Cambridge: Academic Press. doi: 10.1016/B978-0-12-407160-5.00022-1.

[36] Shevchenko, I.V. (2018). Morphological basis of heart morphogenesis in early postnatal development is normal. Bulletin of Problems Biology and Medicine, 3(145), 340-344. doi: 10.29254/2077-4214-2018-3-145-340-344.

[37] Vyas, D.K., & Jacob, D. (1976). Seasonal study of the adrenal gland of some Indian avian species. Acta Anatomica, 95(4), 518-528. doi: 10.1159/000144639.

[38] Ye, L.X., Wang, J.X., Li, P.X., & Zhang, X.T. (2018). Distribution and morphology of ghrelin immunostained cells in the adrenal gland of the African ostrich. Biotechnic & Histochemistry, 93(1), 1-7. doi: 10.1080/10520295.2017.1372631.

[39] Zakrevska, M.V., & Tybinka, A.M. (2019). Histological characteristics of accessory adrenal glands of rabbits with different types of autonomous tonus. Scientific Messenger of Lviv National University of Veterinary Medicine and Biotechnologies, 21(93), 125-130. doi: 10.32718/nvlvet9322.