Особливістю проведеного дослідження є вивчення актуального питання – впливу зовнішніх і внутрішніх факторів на поширеність збудників кровопаразитарних хвороб. До одного з найважливіших зовнішніх факторів впливу належить експозиційна доза γ-випромінювання, оскільки відлов мишоподібних гризунів здійснювався на полігонах осушеного ложа водоймища-охолоджувача Чорнобильської атомної електростанції. Тому метою роботи було дослідити мишоподібних гризунів на наявність збудників кровопаразитарних хвороб у природних популяціях під впливом радіоекологічних умов техногенної трансформації водоймища-охолоджувача Чорнобильської атомної електростанції. Мишоподібні гризуни родів Apodemus і Myodes були досліджені з трьох різних місць водойми-охоложувача з використанням паразитологічних методів. Радіологічними методами було визначено рівень забрудненості зазначених трьох місць відлову мишоподібних гризунів з використанням γ- і β-дозиметра Прип`ять RKS 20.3. Дослідженням мазків крові мишоподібих гризунів із трьох експериментальних полігонів водоймища-охолоджувача Чорнобильської атомної електростанції виявили наявність збудників кровопаразитарних хвороб у 93,8 % тварин. Зокрема, ідентифіковано таких збудників, як Rickettsia spp., Ehrlichia spp., Bartonella spp., Babesia spp., Hepatozoon spp., Haemobartonella (Mycoplasma) spp. і спірохети. Встановлено поширеність збудників зоонозів серед мишоподібних гризунів Чорнобильської зони радіоактивного забруднення, а також її залежність від рівня радіоекологічної забрудненості відповідних полігонів. Отже, за результатами проведених досліджень встановлено наявність збудників кровопаразитарних хвороб серед мишоподібних гризунів, які є як проміжними, так і їх дефінітивними хазяями, у тому числі з небезпечних зоонозів, що, за умови застосування своєчасних і комплексних превентивних заходів, дозволить не допустити зараження ними людини
паразитарні хвороби; рівень опромінення; Myodes glareolus; Apodemus flavicollis; Apodemus agrarius
[1] Alabí, A.S., Monti, G., Otth, C., Sepulveda-García, P., Perles, L., Machado, R.Z., André, M.R., Bittencourt, P., & Müller, A. (2021). Genetic diversity of Hepatozoon spp. in rodents from Chile. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, 30(4), article number e012721. doi: 10.1590/ S1984-29612021082.
[2] Baltrūnaitė, L., Kitrytė, N., & Križanauskienė, A. (2020). Blood parasites (Babesia, Hepatozoon and Trypanosoma) of rodents, Lithuania: Part I. Molecular and traditional microscopy approach. Parasitology Research, 119(2), 687-694. doi: 10.1007/s00436-019-06577-3.
[3] Banović, P., Díaz-Sánchez, A.A., Simin, V., Foucault-Simonin, A., Galon, C., Wu-Chuang, A., Mijatović, D., Obregón, D., Moutailler, S., & Cabezas-Cruz, A. (2022) Clinical aspects and detection of emerging rickettsial pathogens: A “one health” approach study in Serbia, 2020. Frontiers in Microbiology, 12, article number 797399. doi: 10.3389/fmicb.2021.797399.
[4] Colle, A.C., Mendonça, R.F.B., Maia, M.O., Freitas, L.D.C., Witter, R., Marcili, A., Aguiar, D.M., Muñoz-Leal, S., Labruna, M.B., Rossi, R.V., & Pacheco, R.C. (2019). Molecular survey of tickborne pathogens in small mammals from Brazilian Amazonia. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, 28(4), 592-604. doi: 10.1590/S1984-29612019086.
[5] Dwużnik, D., Mierzejewska, E.J., Drabik, P., Kloch, A., Alsarraf, M., Behnke, J.M., & Bajer, A. (2019). The role of juvenile Dermacentor reticulatus ticks as vectors of microorganisms and the problem of ‘meal contamination’. Experimental and Applied Acarology, 78(2), 181-202. doi: 10.1007/s10493-019-00380-6.
[6] Environmental impact assessment of the drawdown of the Chernobyl NPP cooling pond as a basis for its decommissioning and remediation. (2019). Vienna: IAEA.
[7] European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Research and Other Scientific Purposes. (1986). Retrieved from https://rm.coe.int/168007a67b.
[8] General Ethical Principles for Experiments on Animals. (2018). Retrieved from http://surl.li/ kcehf.
[9] Gomes, L. de A., Moraes, L.A., Aguiar, D.C.F., Dias, H.L.T., Ribeiro, A.S.S., Rocha, H.P. do C.R., Nunes, M.R.T., & Gonçalves, E.C. (2018). Genetic diversity of Hepatozoon spp. in Hydrochoerus hydrochaeris and Pecari tajacu from eastern Amazon. Ticks and Tick-Borne Diseases, 9(2), 314- 318. doi: 10.1016/j.ttbdis.2017.11.005.
[10] Grzybek, M., Tołkacz, K., Alsarraf, M., Dwużnik, D., Szczepaniak, K., Tomczuk, K., Biernat, B., Behnke, J.M., & Bajer, A. (2020). Seroprevalence of tick-borne encephalitis virus in three species of voles (Microtus spp.) in Poland. Journal of Wildlife Diseases, 56(2), 492-494. doi: 10.7589/2019-02-048.
[11] Hamšíková, Z., Silaghi, C., Rudolf, I., Venclíková, K., Mahríková, L., Slovák, M., Mendel, J., Blažejová, H., Berthová, L., Kocianová, E., Hubálek, Z., Schnittger, L., & Kazimírová, M. (2016). Molecular detection and phylogenetic analysis of Hepatozoon spp. in questing Ixodes ricinus ticks and rodents from Slovakia and Czech Republic. Parasitology Research, 115(10), 3897- 3904. doi: 10.1007/s00436-016-5156-5.
[12] Hornok, S., Csörgő, T., de la Fuente, J., Gyuranecz, M., Privigyei, C., Meli, M.L., Kreizinger, Z., Gönczi, E., Fernández de Mera, I.G., & Hofmann-Lehmann, R. (2013). Synanthropic birds associated with high prevalence of tick-borne rickettsiae and with the first detection of Rickettsia aeschlimannii in Hungary. Vector-Borne and Zoonotic Diseases, 13(2), 77-83. doi: 10.1089/vbz.2012.1032.
[13] Jeske, K., Herzig-Straschil, B., Răileanu, C., Kunec, D., Tauchmann, O., Emirhar, D., Schmidt, S., Trimpert, J., Silaghi, C., Heckel, G., Ulrich, R.G., & Drewes, S. (2022). Zoonotic pathogen screening of striped field mice (Apodemus agrarius) from Austria. Transboundary and Emerging Diseases, 69(2), 886-890. doi: 10.1111/tbed.14015.
[14] Karbowiak, G., Wita, I., & Czaplinska, U. (2004). Protozoan parasites in the blood of the social vole (Microtus socialis) in Askania. Vestnik Zoologii, 18, 186-187.
[15] Laakkonen, J., Sukura, A., Oksanen, A., Henttonen, H., & Soveri, T. (2001). Haemogregarines of the genus Hepatozoon (Apicomplexa: Adeleina) in rodents from northern Europe. Folia Parasitologica, 48(4), 263-267. doi: 10.14411/fp.2001.043.
[16] Lypska, A.I., Nikolaev, V.I., Shytiuk, V.A., Burdo, O.O., & Vyshnevskyi, D.O. (2022). Radioecological studies on the drained bed areas of the Chornobyl nuclear power plant cooling pond. Nuclear Physics and Energy, 23(4), 263-270. doi: 10.15407/jnpae2022.04.263.
[17] Lypska, A.I., Rodionova, N.K., Ryabchenko, N.M., Burdo, O.O., Ganja, O.B., Vyshnevskyi, D.O., & Ishiniva, H. (2020). Assessment of the state of natural populations of small of small rodents from transformed ecosystems of the ChNPP exclusion zone. Nuclear, 21(4), 328-337. doi: 10.15407/jnpae2020.04.328.
[18] Modarelli, J.J., Westrich, B.J., Milholland, M., Tietjen, M., Castro-Arellano, I., Medina, R.F., & Esteve-Gasent, M.D. (2020). Prevalence of protozoan parasites in small and medium mammals in Texas, USA. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife, 21(11), 229-234. doi: 10.1016/j.ijppaw.2020.02.005.
[19] Paskevych, S.A., & Gorodetskyi, D.V. (2018). Characteristics of vegetation and animal population on the sites of the dried bottom of the ChNPP cooling pond. Problems of Chernobyl Exclusion Zone, 18, 99-102.
[20] Portillo, A., Santibáñez, P., Palomar, A.M., Santibáñez, S., & Oteo, J.A. (2018). ‘Candidatus Neoehrlichia mikurensis’ in Europe. New Microbes and New Infections, 22, 30-36. doi: 10.1016/j. nmni.2017.12.011.
[21] Ramos, C.J.R., de Souza Franco, C., da Luz, S.P., Marques, J., de Souza, K.M., do Nascimento, L.F.N., das Neves, G.B., Moreira, R.S., & Miletti, L.C. (2023) First record of Trypanosoma evansi DNA in Dichelacera alcicornis and Dichelacera januarii (Diptera: Tabanidae) flies in South America. Parasites and Vectors, 16, article number 4. doi: 10.1186/s13071-022-05562-7.
[22] Raoult, D., Fournier, P.-E., Abboud, P., & Caron, F. (2002). First documented human Rickettsia aeschlimannii infection. Emerging Infectious Diseases, 8(7), 748-749. doi: 10.3201/ eid0807.010480.
[23] Rigó, K., Majoros, G., Szekeres, S., Molnár, I., Jablonszky, M., Majláthová, V., Majláth, I., & Földvári, G. (2016). Identification of Hepatozoon erhardovae Krampitz, 1964 from bank voles (Myodes glareolus) and fleas in Southern Hungary. Parasitology Research, 115, 2409-2413. doi: 10.1007/s00436-016-4992-7.
[24] Technical and economic feasibility study of the decommissioning of the cooling pond of Chernobyl NPP, Vol.1, reg. No. 0112U005382 . (2013). Chernobyl: Institute of Problems of Safety of Nuclear Power Plants (IPSNPP).
[25] Turner, C.M.R. (1986). Seasonal and age distributions of Babesia, Hepatozoon, Trypanosoma and Grahamella species in Clethrionomys glareolus and Apodemus sylvaticus populations. Parasitology, 93(2), 279-289. doi: 10.1017/S0031182000051453.
[26] Yen, W.-Y., Stern, K., Mishra, S., Helminiak, L., Santiago, S.-V., & Kim, H.K. (2021). Virulence potential of Rickettsia amblyommatis for spotted fever pathogenesis in mice. Pathogens and Diseases, 79(5), article number 24. doi: 10.1093/femspd/ftab024.