Неспецифічна бронхопневмонія телят завдає значних економічних збитків фермерським господарствам, а тому актуальним є розробка ефективних терапевтичних препаратів, особливо для групового застосування. Заслуговують на увагу лікарські засоби, що застосовуються аерозольно. Метою роботи було дослідити ефективність групового аерозольного методу застосування телятам препарату «Кальфмін» за неспецифічної бронхопневмонії. У дослід залучали телят-аналогів двох-трьох місячного віку як клінічно здорових, так і хворих на неспецифічну бронхопневмонію. Для визначення діагнозу і контролю за функціональним станом організму телят використовували стандартні клінічні та гематологічні методи дослідження. Встановлено, що у крові телят, хворих на неспецифічну бронхопневмонію, відзначалося підвищення кількості лейкоцитів в 1,3 раза (Р<0,05) порівняно з клінічно здоровими тваринами. В їх крові також виявляли збільшення кількості паличкоядерних і сегментоядерних нейтрофілів в 2,0 рази (Р<0,05) і 1,6 раза (Р<0,01), відповідно, та зменшення кількості лімфоцитів в 1,3 раза (Р<0,001) і еозинофілів в 1,4 раза (Р<0,001), відповідно. В хворих телят відмічали зменшення в крові кількості еритроцитів в 1,2 раза (Р<0.001) і вмісту гемоглобіну в 1,2 раза (Р<0.001) порівняно з контролем. Зафіксували покращення клінічного стану і гематологічних показників у хворих тварин упродовж 3-5 діб, скорочення тривалості терапії в 1,9-2,0 рази та 100% збереженість усіх хворих телят
наноаквахелати; срібло; мідь; йод; кобальт; ехінацея пурпурова; морфологія крові
[1] Amat, S., Timsit, E., Baines, D., Yanke, J., & Alexander, T.W. (2019). Development of bacterial therapeutics against the bovine respiratory pathogen mannheimia haemolytica. Applied and Environmental Microbiology, 85(21), article number e01359-19. doi: 10.1128/ AEM.01359-19.
[2] Basoglu, A., Baspinar, N., & Tenori, L., Vignoli, A., & Yildiz, R. (2016). Plasma metabolomics in calves with acute bronchopneumonia. Metabolomics,12, article number 128. doi:10.1007/ s11306-016-1074-x.
[3] Bednarek, D., Kondracki, M., Friton, G.M., Trela, T., & Niemczuk, K. (2005). Effect of steroidal and non-steroidal anti-inflammatory drugs on inflammatory markers in calves with experimentally-induced bronchopneumonia. Berliner und Münchener Tierärztliche Wochenschrift, 118(7-8), 305-308.
[4] Braun, U., Gerspach, C., & Brammertz, C. (2018). The frequency of abnormal ultrasonographic findings in the lungs of 129 calves with bronchopneumonia. Schweizer Archiv für Tierheilkunde, 160(12), 737-741. doi: 10.17236/sat00189.
[5] Buczinski, S., & Pardon, B. (2020). Bovine respiratory disease diagnosis: What progress has been made in clinical diagnosis? Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, 36(2), 399-423. doi: 10.1016/j.cvfa.2020.03.004.
[6] Di Teodoro, G., Marruchella, G., Di Provvido, A., D’Angelo, A.R., Orsini, G., Di Giuseppe, P., Sacchini, F., & Scacchia, M. (2020). Contagious bovine pleuropneumonia: A comprehensive overview. Veterinary Pathology, 57(4), 476-489. doi: 10.1177/0300985820921818.
[7] Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the council “On the Protection of Animals Used for Scientific Purposes”. (2010, September). Retrieved from http://eur-lex. europa.eu/LexUriServ/LexUriServ.do?uri=OJ:L:2010:276:0033:0079:En:PDF.
[8] Drobot, M.V., Tsvilihovskyi, M.I., Dulnev, P.G., & Bereza, V.I. (2013). Composite drug for therapy, aerosol therapy and aerosol prophylaxis of nonspecific catarrhal bronchopneumonia in calves. Patent for the invention No. 101574.
[9] Dudek, K., Nicholas, R.A.J., Szacawa, E., & Bednarek, D. (2020). Mycoplasma bovis infections – occurrence, diagnosis and control. Pathogens, 9(8), article number 640. doi: 10.3390/ pathogens9080640.
[10] Gaeta, N.C., Ribeiro, B.L.M., Alemán, M.A.R., Yoshihara, E., Nassar, A.F.C., Marques, L.M., Timenetsky, J., & Gregory, L. (2018). Bacterial pathogens of the lower respiratory tract of calves from Brazilian rural settlement herds and their association with clinical signs of bovine respiratory disease. Pesquisa Veterinaria Brasileira, 38(3), 374-381. doi: 10.1590/1678-5150-PVB-5323.
[11] Glodek, J., Adamiak, Z., & Przeworski, A. (2016). Magnetic resonance imaging of reptiles, rodents, and lagomorphs for clinical diagnosis and animal research. BMC Complementary Medicine, 66(3), 216-219.
[12] Hermeyer, K., Buchenau, I., Thomasmeyer, A., Baum, B., Spergser, J., Rosengarten, R., & Hewicker-Trautwein, M. (2012). Chronic pneumonia in calves after experimental infection with Mycoplasma bovis strain 1067: Characterization of lung pathology, persistence of variable surface protein antigens and local immune response. Acta Veterinaria Scandinavica, 54, article number 9. doi: 10.1186/1751-0147-54-9.
[13] Horalskyi, L.P., Khomych, V.T., & Kononskyi, O.I. (2015). Fundamentals of histological technique and morphofunctional research methods in normal and pathological conditions: Training. Zhytomyr: Polissya.
[14] Koptev, M.M. (2011). Morpho-functional characteristics of the structural elements of the lungs of rats are normal. Journal of VDNZU “Ukrainian Medical Stomatological Academy”, 11(4(36)), 92-94.
[15] Leenen, K., Driessche, L., Cremer, L., Masmeijer, C., Boyen, F., Deprez, P., & Pardon, B. (2020). Comparison of bronchoalveolar lavage fluid bacteriology and cytology in calves classified based on combined clinical scoring and lung ultrasonography. Preventive Veterinary Medicine, 176, article number 104901. doi: 10.1016/j.prevetmed.2020.104901.
[16] McGill, J.L., & Sacco, R.E. (2020). The immunology of bovine respiratory disease recent advancements. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, 36(2), 333-348. doi: 10.1016/j.cvfa.2020.03.002.
[17] Nedosekov, V.V., Lytvyn, B.L., Polishchuk, V.V., Gomzykov, O.M., & Melnyk, V.V. (2010). Aerosols in veterinary medicine. The guidelines include material on the use of aerosols in veterinary medicine. Kyiv.
[18] Nishi, Y., Tsukano, K., Otsuka, M., Tsuchiya, M., & Suzuki, K. (2019). Relationship between bronchoalveolar lavage fluid and plasma endotoxin activity in calves with bronchopneumonia. Journal of Veterinary Medical Science, 81(7), 1043-1046. doi: 10.1292/jvms.18-0643.
[19] Oliveira, E., Nascente, E.P., Oliveira, L.P., Neto, J.M.S., Roquete, J.C., Santin, A.P.I., & Moura, V.M.B.D. (2020). Macroscopic and microscopic morphology of the trachea and lungs of giant anteater (Myrmecophaga tridactyla). Pesquisa Veterinaria Brasileira, 40(12), 1054-1062. doi: 10.1590/1678-5150-PVB-6608.
[20] Pantoja, B.T.S., Silva, A.R.M., Mondego-Oliveira, R., Silva, T.S., Marques, B.C., Albuquerque, R.P., Sousa, J.C.S., Rici, R.E.G., Miglino, M.A., Sousa, A.L., Franciolli, A.L.R., Sousa, E.M., AbreuSilva, A.L., & Carvalho, R.C. (2020). Morphological study of larynx, trachea, and lungs of Didelphis marsupialis (LINNAEUS, 1758). Veterinary World, 13(10), 2142-2149. doi: 10.14202/ vetworld.2020.2142-2149.
[21] Percie du Sert, N., Ahluwalia, A., Alam, S., Avey, M.T., Baker, V., Browne, W.J., Clark, A., Cuthil, I.C., Dirnagl, U., Emerson, M., Garner, P., Holgate, S.T., Howells, D.W., Hurst, V., Karp, N.A., Lazic, S.E., Lidser, K., MacCallum, C.J., Macleod, M., Pearl, E.J., Peterson, O.H., Rawle, F., Reynolds, P., Rooney, K., Sena, E.S., Silberg, S.D., Steckler, T., & Würbel, H. (2020). Reporting animal research: Explanation and elaboration for the ARRIVE guidelines 2.0. PLOS Biology, 18(7), article number e3000411. doi: 10.1371/journal.pbio.3000411.
[22] Polanco, J.B.A., Mamprim, M.J., Silva, J.P., Inamassu, L.R., & Schimming, B.C. (2020). Computed tomographic and radiologic anatomy of the lower respiratory tract in the red-foot tortoise (Chelonoidis carbonaria). Wildlife Medicine, 40(8), 637-646. doi: 10.1590/1678-5150-PVB-6587.
[23] Schachner, E.R., Sedlmayr, J.C., Schott, R., Lyson, T.R., Sanders, R.K., & Lambertz M. (2017). Pulmonary anatomy and a case of unilateral aplasia in a common snapping turtle (Chelydra serpentine): Developmental perspectives on cryptodiran lungs. Journal of Anatomy, 231(6), 835-848. doi: 10.1111/joa.12722.
[24] Senthilkumaran, C., Clark, M.E., Abdelaziz, K., Bateman, K.G., MacKay, A., Hewson, J., & Caswell, J.L. (2013). Increased annexin A1 and A2 levels in bronchoalveolar lavage fluid are associated with resistance to respiratory disease in beef calves. Veterinary Research, 44, article number 24. doi: 10.1186/1297-9716-44-24.
[25] Sharandak, P., Drobot, M., & Druz, N. (2022). Denial of bronchopneumonia by the aerosol method and its influence on calf production indicators. ScienceRise: Biological Science, 2(31), 18-23. doi: 10.15587/2519-8025.2022.260754.
[26] Suzuki, K., Higuchi, H., Iwano, H., Lakritz, J., Sera, K., Koiwa, M., & Taguchi, K. (2012). Analysis of trace and major elements in bronchoalveolar lavage fluid of Mycoplasma bronchopneumonia in calves. Biological Trace Element Research, 145, 166-171. doi: 10.1007/s12011-011-9180-0.
[27] Van Driessche, L., Vanneste, K., Bogaerts, B., De Keersmaecker, S.C.J., Roosens, N.H., Haesebrouck, F., De Cremer, L., Deprez, P., Pardon, B., & Boyen, F. (2020). Isolation of drugresistant gallibacterium anatis from calves with unresponsive bronchopneumonia, Belgium. Emerging Infectious Diseases, 26(4), 721-730. doi: 10.3201/eid2604.190962.
[28] Wolfger, B., Timsit, E., White, J.B., & Orsel, K. (2015). A systematic review of bovine respiratory disease diagnosis focused on diagnostic confirmation, early detection, and prediction of unfavorable outcomes in feedlot cattle. Veterinary Clinics of North America Food Animal, 31(3), 351-365. doi: 10.1016/j.cvfa.2015.05.005.
[29] Yamamoto, Y., Tanaka, A., Kanamaru, A., Tanaka, S., Tsubone, H., Atoji, Y., & Suzuki, Y. (2003). Morphology of aging lung in F344/N rat: Alveolar size, connective tissue and smooth muscle cell markers. The Anatomical Records Part, 272A(2), 538-547. doi: 10.1002/ar.a.10172.