Український часопис ветеринарних наук

Інформативність постмортальної динаміки скелетних м’язів трупів собак і котів для судово-ветеринарної діагностики смерті внаслідок гострої гіпоксії

Іван Яценко, Роман Казанцев
Завантажити статтю
Анотація

Актуальність дослідження зумовлена потребою у практиці судово-ветеринарної експертизи встановити давність настання смерті собак і котів під час розслідування злочинів проти здоров’я і життя тварин. У зв’язку з цим мета роботи – це вирішення діагностичних судово-ветеринарних завдань щодо інформативності постмортальної дезорганізації скелетних м’язів шиї трупів собак і котів упродовж 72 годин після смерті тварин. Основними методами дослідження діагностичної інформативності постмортальної динаміки скелетних м’язів трупів собак і котів для судово-ветеринарного встановлення умов і давності настання смерті внаслідок гострої гіпоксії є ті, за якими можна комплексно розглянути виокремлену проблему, зокрема, фарбування мазків-відбитків за Папенгеймом-Крюковим, слайдів – гематоксиліном та еозином, флуоресцеїна ізотіоцианатом і за Шабадашем. Обґрунтовано судово-ветеринарне діагностичне значення двох експертних критеріїв: «кількість патернів дезорганізації м’язів шиї трупів собак і котів» і «вміст глікогену в м’язах шиї трупів собак і котів». Доведено, що біотрансформація скелетних м’язів відбувається у наступній послідовності: упродовж перших 24 годин після смерті тварини настає посмертне заклякання м’язів трупів, що супроводжується дегідратацією, ущільненням, скороченням міофібрил; розслаблення м’язів спостерігається з 24 до 48 години після смерті, міофібрили розтягнуті й набряклі; з 48 до 72 години під впливом сапротрофів реєструється аутоліз м’язів. Встановлено, що деструкція скелетної м’язової тканини відбувається інтенсивніше у разі смерті внаслідок задушення порівняно зі смертю від отруєння, а деструкція м’язової тканини динамічніша у разі смерті внаслідок замерзання порівняно зі смертю, спричиненою утопленням у холодній воді. Вперше отримані результати сприятимуть вирішенню діагностичних судово-ветеринарних завдань, зокрема, встановленню давності та умов настання смерті собак і котів під час розслідування правоохоронними органами злочинів стосовно жорстокого поводження з тваринами

Ключові слова

асфіксія; цитоморфологічне дослідження; гістотопограми; патерни деструкції; танатогенез; жорстоке поводження

ЦИТУВАТИ
Yatsenko, I., & Kazantsev, R. (2024). Informativeness of postmortem dynamics of skeletal muscles of dog and cat corpses for forensic veterinary diagnosis of death due to acute hypoxia. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 15(1), 139-167. https://doi.org/10.31548/veterinary1.2024.139
Використані джерела
  1. Abbate, J., Grifò, G., Capparucci, F., Arfuso, F., Savoca, S., Cicero, L., Consolo, G., & Lanteri, G. (2022). Postmortem electrical conductivity changes of Dicentrarchus labrax skeletal muscle: Root mean square (RMS) parameter in estimating time since death. Animals (Basel), 12(9), article number 1062. doi: 10.3390/ani12091062.
  2. Botelho, A.F.M., Machado, A.M.D., da Silva, R.H.S., Faria, A.C., Machado, L.S., Santos, H., Braga, S.D.M., Torres, B.B.J., Miguel, M.P., Chaves, A.R., & Melo, M.M. (2020). Fatal metaldehyde poisoning in a dog confirmed by gas chromatography. BMC Veterinary Research, 16(1), article number 139. doi: 10.1186/s12917-020-02348-w.
  3. DSTU ISO/IEC 17025:2019. (2021). General requirements for the competence of testing and calibration laboratories. Retrieved from http://shop.uas.org.ua/ua/zagal-ni-vimogi-do-kompetentnosti-viprobuval-nih-ta-kalibruval-nih-laboratorij-43549.html.
  4. Du, T., Lin, Z., Xie, Y., Ye, X., Tu, C., Jin, K., Xie, J., & Shen, Y. (2018).  Metabolic profiling of femoral muscle from rats at different periods of time after death. PLoS ONE, 13(9), article number e0203920. doi: 10.1371/journal.pone.0203920. 
  5. European Association for Animal Research. (n.d.). Retrieved from https://www.eara.eu/animal-research-law.
  6. Geissenberger, J., Ehrenfellner, B., Monticelli, F.C., Pittner, S., & Steinbacher, P. (2021). Dismembered porcine limbs as a proxy for postmortem muscle protein degradation. International Journal of Legal Medicine, 135(4), 1627-1636. doi: 10.1007/s00414-021-02571-6. 
  7. Horalskyi, L.P., Khomych, V.T., & Kononskyi, O.I. (2015). Fundamentals of histological technique and morphofunctional methods of research in norm and at pathology. Zhytomyr: “Polissia”.
  8. Kazantsev, R., & Yatsenko, I. (2022). Forensic veterinary diagnosis of dog’s fatal poisoning with anticoagulant rodenticide – bromadiolone. Scientific Bulletin of Veterinary Medicine, 1(173), 120-136. doi: 10.33245/2310-4902-2022-173-1-120-136.
  9. King, M.A., Alzahrani, J.M., Clanton, T.L., & Laitano, O.A. (2021). Preclinical model of exertional heat stroke in mice. Journal of Visualized Experiments, 1(173). doi HYPERLINK "https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34279502/": 10.3791/62738.
  10. Lamri, M., Malva, A.D., Djenane, D., Albenzio, M., & Gagaoua, M. (2023). First insights into the dynamic protein changes in goat Semitendinosus muscle during the post-mortem period using high-throughput proteomics. Meat Science, 202, article number 109207. doi: 10.1016/j.meatsci.2023.109207. 
  11. Li, W., Xing, Y., Gan, L., Peng, W., & Deng, S. (2023). Exploring the value of microorganisms in the appendix for inferring postmortem interval in Sprague-Dawley rats using high-throughput sequencing. Journal of Forensic Sciences, 68(1), 163-175. doi: 10.1111/1556-4029.15173. 
  12. Liao, C.C., Chang, Y.S., Yang, S.Y., & Chou, R.G.R. (2016). Post-mortem proteolysis and tenderisation are more rapid and extensive in female duck breast muscle. British Poultry Science, 57(6), 734-739. doi: 10.1080/00071668.2016.1209736. 
  13. Listos, P., Gryzinska, M., Batkowska, J., Dylewska, M., Dudzinska, E., & Piorkowski, J. (2017). Preliminary study on the estimation of the time of death in animals based on microflora development in a canine's gastrocnemius muscle. Medycyna Weterynaryjna, 73(4), 229-233. doi: 10.21521/mw.5677.
  14. Liu, R., Wang, Q., Zhang, K., Wu, H., Wang, G., Cai, W., Yu, K., Sun, Q., Fan, S., & Wang, Z. (2022). Analysis of postmortem intestinal microbiota successional patterns with application in postmortem interval estimation. Microbial Ecology, 84(4), 1087-1102. doi: 10.1007/s00248-021-01923-4. 
  15. Paltian, J.J., da Fonseca, C.A.R., Pinz, M.P., Luchese, C., & Wilhelm, E.A. (2019). Post-mortem interval estimative through determination of catalase and Δ-aminolevulinate dehydratase activities in hepatic, renal, skeletal muscle and cerebral tissues of Swiss mice. Biomarkers, 24(5), 478-483. doi: 10.1080/1354750X.2019.1619837. 
  16. Piegari, G., De Pasquale, V., d'Aquino, I., De Biase, D., Caccia, G., Campobasso, C. P., Tafuri, S., Russo, V., & Paciello, O. (2023). Evaluation of muscle proteins for estimating the post-mortem interval in veterinary forensic pathology. Animals (Basel), 13(4), article number 563. doi: 10.3390/ani13040563.
  17. Piegari, G., De Biase, D., d'Aquino, I., Prisco, F., Fico, R., Ilsami, R., Pozzato, N., Genovese, A., & Paciello, O. (2019). Diagnosis of drowning and the value of the diatom test in veterinary forensic pathology. Frontiers in Veterinary Science, 6, article number 404. doi: 10.3389/fvets.2019.00404.
  18. Raskin, R.E., Meyer, D., & Boes, K.M. (2022). Canine and feline cytopathology: A color atlas and interpretation. Amsterdam: Elsevier.
  19. Righetti, B.P.H., Lima, D., Dias, V.H.V. Mattos, J.J., Piazza, C.E., Vilas-Boas, L. O.B., Alves, T.C., Almeida, E.A., Lüchmann, K.H., & Bainy, A.C.D. (2022). Life after death? Exploring biochemical and molecular changes following organismal death in green turtles, Chelonia mydas (Linnaeus, 1758). Chemosphere, 308, article number 136569. doi: 10.1016/j.chemosphere.2022.136569. 
  20. Shi, F.X., Li, P., Lu, H.L., Li, N., Du, Q.X., Wang, Y.Y., & Sun, J.H. (2020). Expression of autophagy-associated protein in rat muscle tissues after antemortem and postmortem injury. Fa Yi Xue Za Zhi, 36(3), 293-298. doi: 10.12116/j.issn.1004-5619.2020.03.001.
  21. Skrypka, M., Boyko, Y., Zapeka, I., & Golovan, K. (2023). The practice of forensic-veterinary examination of psycho-emotional stress in the genesis of insufficiency and death of animals. Agrarian Bulletin Black Sea Littoral, 106, 14-22. doi: 10.37000/abbsl.2023.106.02.
  22. Wenzlow, N., Mills, D., Byrd, J., Warren, M., & Long, M.T. (2023). Review of the current and potential use of biological and molecular methods for the estimation of the postmortem interval in animals and humans. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 35(2), 97-108. doi: 10.1177/10406387231153930. 
  23. Zheng, Z., Zhai, X.D., Xia, Z.Y., Li, Y.L., Zhao, L.L., Liu, H.L., & Mo, Y.N. (2019). Relationship between electrical conductivity and chemical content of rat skeletal muscle impregnating solution and postmortem interval. Fa Yi Xue Za Zhi, 35(5), 572-575. doi: 10.12116/j.issn.1004-5619.2019.05.011. 
  24. Zhu, W., Zhai, X., Zheng, Z., Sun, K., Yang, M., & Mo, Y. (2021). New contributions to the relationship between sequential changes of ATP-related metabolites and post-mortem interval in rats. Legal Medicine (Tokyo), 48, article number 101809. doi: 10.1016/j.legalmed.2020.101809.