Особливості топографії і макроскопічної будови органів травлення єменського хамелеону (Chamaeleo calyptratus)

Микола Кущ, Сергій Скачко, Ірина Фесенко, Ольга Мірошнікова, Олена Бирка
Анотація

Актуальність дослідження зумовлена відсутністю детальної інформації стосовно будови і топографії органів травлення єменського хамелеону (Chamaeleo calyptratus). Мета роботи полягала у з’ясуванні особливостей змін маси тіла, топографії і будови органів травлення єменського хамелеону, визначенні їх морфометричних показників у тварин від 1-добового до 1-річного віку. Матеріалом досліджень слугували язик, стравохід, шлунок, кишечник, печінка і підшлункова залоза хамелеонів різної статі 9 вікових груп. Отримані дані обробляли методом однофакторного дисперсійного аналізу (ANOVA). За особливостями топографії, макроскопічної будови і поверхні слизової оболонки в тонкому відділі кишечнику виділено три кишки: дванадцятипалу, порожню і клубову, а в товстому  – дві кишки: ободову з дивертикулом і пряму, що переходить у клоаку. Особливістю серозної оболонки кишечнику хамелеонів є забарвлення меланіном в чорний колір. З 1-добового до 1-річного віку маса тіла хамелеонів збільшувалась в 185,9 раза, довжина тіла від верхівки носа до анального отвору (SVL) – в 6,7 раза, довжина травного каналу – у 3,8 раза, відношення довжини травного каналу до SVL зменшувалось з 3,2 до 1,8 раза. Найінтенсивніше зростання маси тіла і SVL відбувалось впродовж другого і третього місяців життя тварин. Відносна довжина тонкого відділу кишечнику в хамелеонів різних вікових груп становила 65,1-81,6 %, у складі якого найдовшою була порожня кишка. Збільшення морфометричних показників шлунка, кишечнику, печінки і підшлункової залози відбувалось асинхронно. Найвиразніші зміни показників їх відносної маси визначали в тварин 2-3-місячного віку. Отримані матеріали доповнюють і уточнюють інформацію стосовно топографії і особливостей будови органів травлення єменського хамелеону, тому будуть корисними в рентгенографічному і ультразвуковому дослідженні під час проведення ветеринарних маніпуляцій 

Ключові слова

рептилії; шлунок; кишечник; печінка; підшлункова залоза; топографія

ЦИТУВАТИ
Kushch, M., Skachko, S., Fesenko, I., Miroshnikova, O., & Byrka, O. (2024). Features of topography and macroscopic structure of the digestive organs of the Yemeni chameleon (Chamaeleo calyptratus). Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 15(2), 138-156. https://doi.org/ 10.31548/veterinary2.2024.138
Використані джерела

1. Al-Doaiss, A.A., Alshehri, M.A., Shati, A.A., Alfaifi, M.Y., Al-Kahtani, M.A., Ahmed, A.E., Eid, R.A., Alshuraym, L.A., Al-Mekhlafi, F.A., Al-Zharani, M., & Mubarak, M. (2023). Histomorphological, histochemical and ultrastructural studies on the healthy liver of Yemen veiled chameleon (Chamaeleo calyptratus) in southern Saudi Arabia. International Journal of Morphology, 41(5), 1513-1526.

2. Ardente, A., Toddes, B., & Schultz, R.L. (2023). Nutritional considerations for juvenile exotic companion animals. Veterinary Clinics of North America: Exotic Animal Practice, 27(2), 449-463. doi: 10.1016/j.cvex.2023.11.016.

3. Çakici, Ö., & Akat, E. (2013). Some histomorphological and histochemical characteristics of the digestive tract of the snake-eyed lizard, Ophisops elegans Menetries, 1832 (Squamata: Lacertidae). North-Western Journal of Zoology, 9(2), 257-263.

4. Crouch, E.E.V., McAloose, D., McEntire, M.S., Morrisey, J.K., & Miller, A.D. (2021). Pathology of the Bearded Dragon (Pogona vitticeps): A retrospective analysis of 36 cases. Journal of Comparative Pathology, 186, 51-61. doi: 10.1016/j.jcpa.2021.05.004.

5. Diaz-Figueroa, R., & Mitchell, M.A. (2006). Gastrointestinal anatomy and physiology, In Reptile medicine and surgery (pp. 145-162). Philadelphia: W.B. Saunders. doi: 10.1016/B0-72-169327-X/50016-X.

6. Engelke, E., Pfarrer, C., Radelof, K., Fehr, M., & Mathes, K.A. (2020). Gross anatomy, histology and blood vessel topography of the alimentary canal of the Inland Bearded Dragon (Pogona vitticeps). PLoS ONE, 15(6), article number e0234736. doi: 10.1371/journal.pone.0234736.

7. European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Experimental and Scientific Purposes. (1986). Retrieved from http://zakon4.rada.gov.ua/laws/show/994_137.

8. Fouda, Y.A., Sabry, D.A., & Abou-Zaid, D.F. (2015). Functional anatomical, histological and ultrastructural studies of three chameleon species: Chamaeleo chamaeleon, Chamaeleo africanus, and Chamaeleon vulgaris. International Journal of Morphology, 33(3), 1045-1053. doi:10.4067/S0717-95022015000300038.

9. Frei, S., Sanchez-Migallon Guzman, D., Kass, P.H., Giuffrida, M.A., & Mayhew, P.D. (2020). Evaluation of a ventral and a left lateral approach to coelioscopy in bearded dragons (Pogona vitticeps). American Journal of Veterinary Research, 81(3), 267-275. doi: 10.2460/ajvr.81.3.267.

10. Gavrylin, P.M., & Nikitina, M.O. (2017). Morphometric parameters of the intestine and aggregated lymphatic nodules of meat rabbits. Regulatory Mechanisms in Biosystems, 8(4), 649-655. doi: 10.15421/0217100.

11. Gimmel, A., Kempf, H., Öfner, S., Müller, D., & Liesegang, A. (2017). Cholelithiasis in adult bearded dragons: Retrospective study of nine adult bearded dragons (Pogona vitticeps) with cholelithiasis between 2013 and 2015 in Southern Germany. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 101(1), 122-126. doi: 10.1111/jpn.12616.

12. Gould, S.J. (1977). Ontogeny and phylogeny. Cambridge: The Belknap Press of Harvard University Press.

13. Hamdi, H., El-Ghareeb, A.-W., Zaher, M., Essa, A., & Lahsik, S. (2014). Anatomical, histological and histochemical adaptations of the reptilian alimentary canal to their food habits: II-Chamaeleon africanus. World Applied Sciences Journal, 30(10), 1306-1316. doi: 10.5829/idosi.wasj.2014.30.10.82395.

14. Herrel, A., Redding, C.L., Meyers, J.J., & Nishikawa, K.C. (2014). The scaling of tongue projection in the veiled chameleon, Chamaeleo Calyptratus. Zoology, 117(4), 227-236. doi: 10.1016/j.zool.2014.01.001.

15. Iji, P.A., Saki, A., & Tivey, D.R. (2001). Body and intestinal growth of broiler chickens on a commercial starter diet. 1. Intestinal weight and mucosal development. British Poultry Science, 42(4), 505-513. doi: 10.1080/00071660120073151.

16. Kohl, K.D., Brun, A., Magallanes, M., Brinkerhoff, J., Laspiur, A., Acosta, J.C., Bordenstein, S.R., & Caviedes-Vidal, E. (2016). Physiological and microbial adjustments to diet quality permit facultative herbivory in an omnivorous lizard. Journal of Experimental Biology, 219(12), 1903-1912. doi: 10.1242/jeb.138370.

17. Kubiak, M., Denk, D., & Stidworthy, M.F. (2020). Retrospective review of neoplasms of captive lizards in the United Kingdom. Veterinary Record, 186(1), article number 28. doi: 10.1136/vr.105308.

18. La’Toya, L.V. (2023). Updates for reptile pediatric medicine. Veterinary Clinics of North America: Exotic Animal Practice, 27(2), 379-409. doi: 10.1016/j.cvex.2023.11.013.

19. Lee, H.S., & Ku, S.K. (2004). An immunohistochemical study of endocrine cells in the alimentary tract of the grass lizard, Takydromus wolteri Fischer (Laceridae). Acta Histochemica, 106(2), 171-178. doi: 10.1016/j.acthis.2003.10.008.

20. Mans, C. (2013). Clinical update on diagnosis and management of disorders of the digestive system of reptiles. Journal of Exotic Pet Medicine, 22(2), 141-162. doi: 10.1053/j.jepm.2013.05.006.

21. Mathes, K.A., Radelof, K., Engelke, E., Rohn, K., Pfarrer, C., & Fehr, M. (2019). Specific anatomy and radiographic illustration of the digestive tract and transit time of two orally administered contrast media in Inland bearded dragons (Pogona vitticeps). PLoS ONE, 14(8), article number e0221050. doi: 10.1371/journal.pone.0221050.

22. Mazurkevych, T., & Usenko, S. (2023). Morphogenesis of immune formations of ducks’ intestine. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. Series: Veterinary Sciences, 25(112), 90-97. doi: 10.32718/nvlvet11215.

23. Melero, A., Novellas, R., Mallol, C., Ríos, J., Silvestre, A.M., & Martorell, J. (2020). Ultrasonographic appearance of the coelomic cavity organs in healthy veiled chameleons (Chamaeleo calyptratus) and panther chameleons (Furcifer pardalis). Veterinary Radiology & Ultrasound, 61(1), 58-66. doi: 10.1111/vru.12820.

24. Melero, A., Verdés, J., Espada, Y., Novellas, R., Encinoso, M., & Martorell, J. (2023). Computed tomography of the coelomic cavity in healthy veiled chameleons (Chamaeleo calyptratus) and panther chameleons (Furcifer pardalis). Open Veterinary Journal, 13(9), 1071-1081. doi: 10.5455/ovj.2023.v13.i9.2.

25. Necas, P. (2004). Chameleons. Nature's hidden jewels. Frankfurt am Main: Edition Chimaira & Serpent's Tale, Frankfurt am Main.

26. Parsons, T.S., & Cameron, J.E. (1977). Internal relief of the digestive tract. In Biology of the Reptilia (pp. 159-223). New York: Academic Press.

27. Pinto, B.J., Card, D.C., Castoe, T.A., Diaz, R.E. Jr, Nielsen, S.V., Trainor, P.A., & Gamble, T. (2019). The transcriptome of the veiled chameleon (Chamaeleo calyptratus): A resource for studying the evolution and development of vertebrates. Developmental Dynamics, 248(8), 702-708. doi: 10.1002/dvdy.20.

28. Skrypka, M.V., Panikar, I.I., Kyrychko, B.P., & Tul, O.I. (2020). The Morphological features of the digestive tube in sand lizards, Lacerta agilis (Sauria, Lacertidae). Zoodiversity, 54(5), 375-382. doi: 10.15407/zoo2020.05.375.

29. Sollom, H.J., & Baron, H.R. (2023). Clinical presentation and disease prevalence of captive central bearded dragons (Pogona vitticeps) at veterinary clinics in Australia. Australian Veterinary Journal, 101(5), 200-207. doi: 10.1111/avj.13234.

30. Srichairat, N., Taksintum, W., & Chumnanpuen, P. (2018). Gross morphological structure of digestive system in water monitor lizard Varanus salvator (Squamata: Varanidae). Walailak Journal of Science and Technology, 15(3), 245-253. doi: 10.48048/wjst.2018.3356.

31. Tang, G.S., Liang, X.X., Yang, M.Y., Wang, T.T., Chen, J.P., Du, W.G., Li, H., & Sun, B.J. (2020). Captivity influences gut microbiota in crocodile lizards (Shinisaurus crocodilurus). Frontiers in Microbiology, 11, article number 550. doi: 10.3389/fmicb.2020.00550.

32. Troyer, K. (1984). Diet selection and digestion in Iguana iguana: The importance of age and nutrient requirements. Oecologia, 61(2), 201-207. doi: 10.1007/BF00396761.

33. Tul, О.І. (2021). Morphological structure of the liver and gall bladder of the Yemeni chameleon (Chamaeleo calyptratus). In The international scientific and practical internet conference “Actual issues of forensic veterinary medicine, morphology and pathomorphology” (pp. 31-32). Odesa: Odesa National Agrarian University.

34. Wainwright, P.C., Kraklau, D.M., & Bennett, A.F. (1991). Kinematics of tongue projection in Chamaeleo oustaleti. Journal of Experimental Biology, 159, 109-133.

35. Youngblut, N.D., Reischer, G.H., Walters, W., Schuster, N., Walzer, C., Stalder, G., Ley, R.E., & Farnleitne, A.H. (2019). Host diet and evolutionary history explain different aspects of gut microbiome diversity among vertebrate clades. Nature Communications, 10, 1-15. doi: 10.1101/484006.

36. Yovchev, D., Dimitrov, D., & Penchev, G. (2013). Age weight and morphometrical parameters of the bronze turkey’s (Meleagris meleagris gallopavo) intestines. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 19(3), 611-614.

37. Zaher, M., El-Ghareeb, A.-W., Hamdi, H., Essa, A., & Lahsik, S. (2012). Anatomical, histological and histochemical adaptations of the reptilian alimentary canal to their food habits: I. Uromastyx aegyptiaca. Life Science Journal, 9(3), 84-104.