Український часопис ветеринарних наук

Відмінності ліпідограми сироватки крові кіз із різним тонусом автономної нервової системи

Богдан Бойчук, Валентин Карповський, Ігор Грищук, Валентин Карповський, Андрій Грищук
Завантажити статтю
Анотація

Козівництво є перспективною галуззю тваринництва, оскільки за статистикою попит на споживання молочної і м’ясної продукції кіз на світових ринках стрімко зростає. Для насичення ринку необхідною кількістю продукції потрібні нові методичні підходи з покращення продуктивності тварин зі збереженням якості вихідної сировини. У звʼязку з цим, метою дослідження було визначення впливу тонусу автономної нервової системи на обмін ліпідів в організмі кіз. Для дослідження використовували тварин породи Зааненська, формування дослідних груп проводилось з урахуванням результатів варіаційно-пульсометричного дослідження і даних електрокардіографії з подальшим визначенням тонусу автономної нервової системи за методикою Баєвського. Дослідження ліпідограми сироватки крові кіз здійснювали за допомогою спектрофотометра LabLine-010. У зразках сироватки крові здійснювали біохімічний аналіз наступних показників: вмісту триацилгліцеролів, холестеролу, ліпопротеїнів високої, низької і дуже низької щільності та розраховували величину індексу атерогенності. Встановлено, що вміст триацилгліцеролів набував значень менших на 23% (Р < 0,05) у симпатотоніків та на 41% (P < 0,001) в тварин ваготоніків порівняно з нормотоніками. Рівень ліпопротеїнів низької щільності у сироватці крові симпатотоніків зменшувався на 40% (Р < 0,05), а у ваготоніків  – на 76% (Р < 0,01), відносно нормотоніків. Уміст ліпопротеїнів високої щільності у симпатотоніків збільшувався на 36% (Р<0,001), відносно нормотоніків. Рівень холестеролу в сироватці крові кіз відрізнявся значеннями вищими на 16% (Р < 0,01) у симпатотоніків та на 15% (Р < 0,01) у ваготоніків порівняно з нормотоніками. Визначено істотний вплив тонусу автономної нервової системи на процеси підтримання ліпідного гомеостазу в організмі кіз. Врахування індивідуальних особливостей впливу автономної нервової системи на метаболізм ліпідів при розподілі тварин сприятиме ефективному коригуванню раціонів. Адже кожна тварина має різний тонус автономної нервової системи, що істотно впливає на особливості перетворення речовин в її організмі 

Ключові слова

обмін ліпідів; холестерол; ліпопротеїни різної щільності; коефіцієнт атерогенності; автономна регуляція

ЦИТУВАТИ
Boychuk, B., Karpovskyi, V., Hryshchuk, I., Karpovskyi, V., & Hryshchuk, A. (2024). Differences in the serum lipid profile of goats with varying autonomic nervous system tone. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 15(3), 24-40. https://doi.org/10.31548/veterinary3.2024.24
Використані джерела
  1. Allaoua, S.A., Mahdi, D., Zerari, A., & Rouar, S. (2021). Establishment of blood chemistry reference intervals for Arbia goats, including values in phases of reproduction. Comparative Clinical Pathology, 30, 493-502. doi: 10.1007/s00580-021-03243-y.
  2. Antunović, Z., Novaković, K., Klir, Ž., Šerić, V.Š., Mioč, B., Šperanda, M., Ronta, M., & Novoselec, J. (2020). Blood metabolic profile and acid-base status of Istrian goats-a critically endangered Croatian goat-in relation to age. Veterinarski Arhiv, 90(1), 27-38. doi: 10.24099/vet.arhiv.0780.
  3. Baevsky, R.M., et al. (2001). Analysis of heart rate variability when using different electrocardiographic systems (methodological recommendations). Bulletin of Arrhythmology, 24, 65-87.
  4. Durosaro, S.O., Iyasere, O.S., Ilori, B.M., Oyeniran, V.J., & Ozoje, M.O. (2023). Molecular regulation, breed differences and genes involved in stress control in farm animals. Domestic Animal Endocrinology, 82, article number 106769. doi: 10.1016/j.domaniend.2022.106769.
  5. European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Research and Other Scientific Purposes. (1986). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/994_137#Text.
  6. Faisal, H.T., Abid, M.K., & Abed, A. (2022). Study of some biochemical parameters in dose during pregnancy in goats. Journal of Advanced Zoology, 43(1), 1-6. doi: 10.17762/jaz.v43i1.109.
  7. Fougère, H., Delavaud, C., Le Faouder, P., Bertrand‐Michel, J., & Bernard, L. (2021). Triacylglycerols and polar lipids in cow and goat milk are differentially affected by various lipid supplemented diets. European Journal of Lipid Science and Technology, 123(10), article number 2100009. doi: 10.1002/ejlt.202100009.
  8. Friedewald, W.T., Levy, R.I., & Fredrickson, D.S. (1972). Estimation of the concentration of low-density lipoprotein cholesterol in plasma, without use of the preparative ultracentrifuge. Clinical Chemistry, 18(6), 499-502. doi: 10.1093/clinchem/18.6.499.
  9.      Huang, Y., Kong, Y., Li, B., Zhao, C., Loor, J. J., Tan, P., & Wang, J. (2023a). Effects of perinatal stress on the metabolites and lipids in plasma of dairy goats. Stress Biology, 3, article number 11. doi: 10.1007/s44154-023-00088-z.
  10. Huang, Y., Kong, Y., Shen, B., Li, B., Loor, J.J., Tan, P., & Wang, J. (2023b). Untargeted metabolomics and lipidomics to assess plasma metabolite changes in dairy goats with subclinical hyperketonemia. Journal of Dairy Science, 106(5), 3692-3705. doi: 10.3168/jds.2022-22812.
  11. Ianni, A., Bennato, F., Martino, C., Colapietro, M., & Martino, G. (2021). Whole blood transcriptome profiling reveals positive effects of olive leaves-supplemented diet on cholesterol in goats. Animals, 11(4), artiсle number 1150. doi: 10.3390/ani11041150.
  12. LeBouef, T., Yaker, Z., & Whited, L. (2023). Physiology, autonomic nervous system. Retrieved from https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK538516/.
  13. Li, Q., Chao, T., Wang, Y., Xuan, R., Guo, Y., He, P., Zhang, L., & Wang, J. (2024). Comparative metabolomics reveals serum metabolites changes in goats during different developmental stages. Scientific Reports, 14(1), article number 7291. doi: 10.1038/s41598-024-57803-7.
  14. Liu, S., Wang, X., Li, Y., Shi, B., Guo, X., Zhao, Y., & Yan, S. (2021). Flaxseed oil and heated flaxseed supplements have different effects on lipid deposition and ileal microbiota in Albas cashmere goats. Animals, 11(3), article number 790. doi: 10.3390/ani11030790.
  15. M’hir, S., Ayed, L., De Pasquale, I., Fanizza, E., Tlais, A. Z. A., Comparelli, R., Verni, M., Latronico, R., Gobbetti, M., Di Cagno, Filannino, P., & Filannino, P. (2024). Comparison of milk kefirs obtained from cow’s, ewe’s and goat’s milk: Antioxidant role of microbial-derived exopolysaccharides. Antioxidants, 13(3), article number 335. doi: 10.3390/antiox13030335.
  16. Metz, M., et al. (2022). Leptin increases hepatic triglyceride export via a vagal mechanism in humans. Cell Metabolism, 34(11), 1719-1731. doi: 10.1016/j.cmet.2022.09.020.
  17. Min, L., Wang, G., Tong, X., Yang, H., Sun, H., Zhang, Z., Xu., B., Li, D., Zhang, Sh., & Li, G. (2023). Feeding aquilaria sinensis leaves modulates lipid metabolism and improves the meat quality of goats. Foods, 12(3), article number 560. doi: 10.3390/foods12030560.
  18. Procedure for Conducting Research and Experiments on Animals by Scientific Institutions. (2012, March). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/card/z0416-12
  19. Rawat, K., Gupta, R.S., Kurechiya, N., Rawat, N.S., & Mahour, S.S. (2021). Variation in hematology and blood biochemical profile during pregnancy in Sirohi goats. Journal of Entomology and Zoology Studies, 9(1), 2180-2182.
  20. Shen, Y., Jiang, Y., Zhang, S., Zou, J., Gao, X., Song, Y., & Jiang, Q. (2022). The effect of dietary supplementation with resveratrol on growth performance, carcass and meat quality, blood lipid levels and ruminal microbiota in fattening goats. Foods, 11(4), article number 598. doi: 10.3390/foods11040598.
  21. Singh, M.K., Singh, S.K., & Chauhan, M.S. (2023). Exploring potential of goat based dairy farming in India and way forward. The Indian Journal of Animal Sciences, 93(3), 243-250. doi: 10.56093/ijans.v93i3.114871.
  22. Wang, D.D., Tang, G.F., Li, Y.Y., Yu, J.J., Lei, X.J., Cao, Y.C., & Yao, J.H. (2023). Differences in serum metabolome profile explain individual variation in growth performance of young goats. Journal of Proteomics, 288, article number 104982. doi: 10.1016/j.jprot.2023.104982.
  23. Wang, L., Zhang, P., Du, Y., Wang, C., Zhang, L., Yin, L., & Huang, W. (2024). Effect of heat stress on blood biochemistry and energy metabolite of the Dazu black goats. Frontiers in Veterinary Science, 11, article number 1338643. doi: 10.3389/fvets.2024.1338643.
  24. Wu, J., Luo, J., He, Q., Xia, Y., Tian, H., Zhu, L., Li, C., & Loor, J.J. (2023a). Docosahexaenoic acid alters lipid metabolism processes via H3K9ac epigenetic modification in dairy goat. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 71(22), 8527-8539. doi: 10.1021/acs.jafc.3c01606.
  25. Wu, J., Luo, J., Xia, Y., An, X., Guo, P., He, Q., Tian, H., Hu, Q., Li, C., & Wang, H. (2023b). Goat FADS2 controlling fatty acid metabolism is directly regulated by SREBP1 in mammary epithelial cells. Journal of Animal Science, 101, article number skad030. doi: 10.1093/jas/skad030.
  26. Zamuner, F., Cameron, A.W.N., Carpenter, E.K., Leury, B.J., & DiGiacomo, K. (2020). Endocrine and metabolic responses to glucose, insulin, and adrenocorticotropin infusions in early-lactation dairy goats of high and low milk yield. Journal of Dairy Science, 103(12), 12045-12058. doi: 10.3168/jds.2020-18625.
  27. Zhang, Y.M., De, A.O., Lei, K.W., Lin, X.I., Spears, J.W., Shi, H.T., Huang, Y.L., & Yang, F.L. (2023). Dietary copper supplementation modulates performance and lipid metabolism in meat goat kids. Journal of Integrative Agriculture, 22(1), 214-221. doi: 10.1016/j.jia.2022.08.066.
  28. Zheng, M., Xilin, L.I., Qiongxian, Y.A.N., Chuanshe, Z.H.O.U., Zhiliang, T.A.N., & Zhang, P. (2021). Effects of different Zinc sources on growth performance, Serum biochemical indexes and Zinc metabolism of pregnant goats and their off spring. Kafkas Universitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 27(2), 141-149. doi: 10.9775/kvfd.2020.24858.