Український часопис ветеринарних наук

Виявлення носового носійства метицилін-резистентного Staphylococcus aureus у кіз та профілю стійкості збудника до антимікробних препаратів

Біджой Баруа, Сайдул Іслам, Мохаммад Махбуб Хасан, Ашрафул Іслам
Завантажити статтю
Анотація

Метицилін-резистентний Staphylococcus aureus (MRSA) є глобальною проблемою у ветеринарній медицині через його здатність викликати носові інфекції у кіз. Дослідження було проведено з метою оцінки поширеності цієї бактерії у кіз та визначення її профілю стійкості до антимікробних препаратів. Загалом було зібрано 153 зразки мазків з носа кіз, а також використано анкетування для збору необхідної супутньої інформації. Було проведено стандартний лабораторний аналіз для виявлення MRSA та визначення його чутливості до антибіотиків. Серед 153 зразків у 20,9 % було виявлено Staphylococcus aureus на основі культурних та біохімічних властивостей. Загалом, у 4,58 % зразків було виявлено наявність гена mecA. Поширеність MRSA була вищою серед молодих кіз віком до 1 року й становила 7,14 %. У самок поширеність становила 5,05 %, що більше, ніж у самців – 3,70 %. У кіз породи Black Bengal поширеність була найвищою – 11,11 %, а в умовах напівінтенсивного утримання – 7,89 %. Метицилін-резистентний Staphylococcus aureus виявив 100% стійкість до Цефокситину та Оксациліну. Також спостерігалася стійкість 42,86 % до ампіциліну, еритроміцину та окситетрацикліну, 14,29 % – до цефтріаксону та гентаміцину, та 28,57 % – до ципрофлоксацину. Виявлення MRSA у 4,58 % зразків та мультирезистентного MRSA у кіз свідчить про серйозну загрозу для громадського та ветеринарного здоров’я. Ідентифікація кіз як потенційних носіїв MRSA підкреслює необхідність посиленого епіднагляду, біобезпеки та відповідального використання антибіотиків у тваринництві. Ці результати можуть стати основою для ветеринарів, фермерів і політиків при розробці ефективних стратегій стримування поширення резистентних бактерій від тварин до людей, особливо в регіонах з тісними контактами між людиною і тваринами

Ключові слова

поширеність; ген mecA; тестування чутливості до антимікробних препаратів (AST); стафілококова інфекція; фактори ризику; коза

ЦИТУВАТИ
Barua, B., Islam, S., Hasan , M.M., & Islam, A. (2025). Identification of methicillin-resistant Staphylococcus aureus from nasal carriage of goat and their antimicrobial resistance profiles. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 16(2), 63-75. https://doi.org/10.31548/veterinary2.2025.63
Використані джерела

[1] Abdullahi, I.N., Lozano, C., Saidenberg, A.B.S., Latorre-Fernández, J., Zarazaga, M., & Torres, C. (2023). Comparative review of the nasal carriage and genetic characteristics of Staphylococcus aureus in healthy livestock: Insight into zoonotic and anthroponotic clones. Infection, Genetics and Evolution, 109, article number 105408. doi: 10.1016/j. meegid.2023.105408.

[2] Altaf, M. (2019). Molecular characterization of methicillin resistant Staphylococcus aureus (MRSA) and associated risk factors with the occurrence of goat mastitis. Pakistan Veterinary Journal, 40(1). doi: 10.29261/pakvetj/2019.079.

[3] Bangladesh Bureau of Statistics. (2024). Livestock economy at a glance (2023-2024). Retrieved from https://dls.portal.gov.bd/sites/default/files/files/dls.portal.gov.bd/page/ee5f4621_ fa3a_40ac_8bd9_898fb8ee4700/2024-08-13-10-26-93cb11d540e3f853de9848587fa3c81e.pdf.

[4] Bangladesh National Portal. (2022). Bangladesh economic review 2022. Retrieved from https://mof.portal.gov.bd/site/page/28ba57f5-59ff-4426-97ab014242179e/BangladeshEconomic--eview-2022.

[5] Barua, P., Rahman, S.H., & Barua, M. (2021). Sustainable value chain approach for livestockbased livelihood strategies for communities of the southeastern coast of Bangladesh. Modern Supply Chain Research and Applications, 3(3), 191-225. doi: 10.1108/MSCRA-08-2020-0021.

[6] Broekema, N.M., Van, T.T., Monson, T.A., Marshall, S.A., & Warshauer, D.M. (2009). Comparison of cefoxitin and oxacillin disk diffusion methods for detection of mecA-mediated resistance in Staphylococcus aureus in a large-scale study. Journal of Clinical Microbiology, 47(1), 217-219. doi: 10.1128/jcm.01506-08.

[7] Clinical and Laboratory Standards Institute. (2020). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing (30th ed.). Wayne: CLSI.

[8] Egyir, B., Hadjirin, N. F., Gupta, S., Owusu, F., Agbodzi, B., Adogla-Bessa, T., Kwasi Addo, K., Stegger, M., Larsen, A.R., & Holmes, M.A. (2020). Whole-genome sequence profiling of antibiotic-resistant Staphylococcus aureus isolates from livestock and farm attendants in Ghana. Journal of Global Antimicrobial Resistance, 22, 527-532. doi: 10.1016/j.jgar.2020.03.029.

[9] European Convention for the Protection of Vertebrate Animals used for Experimental and Other Scientific Purposes. (1986, March). Retrieved from https://rm.coe.int/168007a67b.

[10] FAO. (2018). Shaping the future of livestock: Sustainably, responsibly, efficiently. Retrieved from https://openknowledge.fao.org/items/050a596e-c861-4405-ba8f-bc5246b6a2ac.

[11] Gharsa, H., Slama, K.B., Lozano, C., Gómez-Sanz, E., Klibi, N., Sallem, R.B., Gómez, P., Zarazaga, M., Boudabous, A., & Torres, C. (2012). Prevalence, antibiotic resistance, virulence traits and genetic lineages of Staphylococcus aureus in healthy sheep in Tunisia. Veterinary Microbiology, 156(3-4), 367-373. doi: 10.1016/j.vetmic.2011.11.009.

[12] Haque, M., Islam, M.A., Bhuiyan, A.K.F.H., Akter, A., & Hossain, M.M. (2023). Livelihood improvement of poor farmers through goat rearing. Journal of Agriculture, Food and Environment (JAFE), 4(1), 5-10. doi: 10.47440/JAFE.2023.4102.

[13] Herawati, O, Bejo, S.K., Zakaria, Z., & Ramanoon, S.Z. (2023). The global profile of antibiotic resistance in bacteria isolated from goats and sheep: A systematic review. Veterinary World, 16(5), 977-986. doi: 10.14202/vetworld.2023.977-986.

[14] Islam, M.A., Biswas, P., Sabuj, A.A.M., Haque, Z.F., Saha, C.K., Alam, M.M., Rahman, M.T., & Saha, S. (2019). Microbial load in bio-slurry from different biogas plants in Bangladesh. Journal of Advanced Veterinary and Animal Research, 6(3), 376-383. doi: 10.5455/javar. 2019.f357.

[15] Larsen, A.R., Stegger, M., & Sørum, M. (2008). spa typing directly from a mecA, spa, and pvl multiplex PCR assay – lance. Clinical Microbiology and Infection, 14(6), 611-614. doi: 10.1111/j.1469-0691.2008.01995.x.

[16] Li, X., Robinson, S.M., Gupta, A., Saha, K., Jiang, Z., Moyano, D.F., Sahar, A., Riley, M.A., & Rotello, V.M. (2014). Functional gold nanoparticles as potent antimicrobial agents against multi-drug-resistant bacteria. ACS Nano, 8(10), 10682-10686. doi: 10.1021/nn5042625.

[17] Mechesso, A.F., et al. (2021). Resistance profiling and molecular characterization of Staphylococcus aureus isolated from goats in Korea. International Journal of Food Microbiology, 336, article number 108901. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2020.108901.

[18] Moroz, A., et al., (2020). Nasal carriage of various staphylococcal species in small ruminant lentivirus-infected asymptomatic goats. Polish Journal of Veterinary Sciences, 23(2), 203-209. doi: 10.24425/pjvs.2020.133634.

[19] Muwonge, K.M., Ndagire, H., Mulindwa, J., & Twesigye, C.K. (2025). Multiple antimicrobial resistance indices of Staphylococcus aureus from the nares of goats and slaughterhouse attendants in Kampala city, Uganda – a cross sectional study. BMC Microbiol, 25, article number 162. doi: 10.1186/s12866-025-03891-y.

[20] Nsofor, C.A., & Patience, O.O. (2019). Prevalence and antibiogram of Staphylococcus aureus isolated from herd of goat, cow and ram at Obinze, Imo State, Nigeria. Microbiology & Infectious Diseases, 3(2), 1-5.

[21] Omoshaba, E.O., Ojo, O.E., Oyekunle, M.A., Sonibare, A.O., & Adebayo, A.O. (2020). Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) isolated from raw milk and nasal swabs of small ruminants in Abeokuta, Nigeria. Tropical Animal Health and Production, 52(5), 2599-2608. doi: 10.1007/s11250-020-02301-x.

[22] Pal, M., Kerorsa, G. B., Marami, L. M., & Kandi, V. (2020). Epidemiology, pathogenicity, animal infections, antibiotic resistance, public health significance, and economic impact of Staphylococcus aureus: A comprehensive review. American Journal of Public Health Research, 8(1), 14-21. doi: 10.12691/ajphr-8-1-3.

[23] Piva, S., et al. (2021). Epidemiologic case investigation on the zoonotic transmission of infection from goat to veterinarians. Zoonoses and Public Health, 68(6), 684-690. doi: 10.1111/ zph.12836.

[24] Rahimi, H., Saei, H.D., & Ahmadi, M. (2015). Nasal carriage of Staphylococcus aureus: Frequency and antibiotic resistance in healthy ruminants. Jundishapur Journal of Microbiology, 8(10), article number e22413. doi: 10.5812/jjm.22413.

[25] Sakr, A., Brégeon, F., Mège, J.L., Rolain, J.M., & Blin, O. (2018). Staphylococcus aureus nasal colonization: An update on mechanisms, epidemiology, risk factors, and subsequent infections. Frontiers in Microbiology, 9, article number 2419. doi: 10.3389/fmicb.2018.02419.

[26] Titouche, Y., et al. (2024). Phenotypic and genotypic characterization of Staphylococcus aureus isolated from nasal samples of healthy dairy goats in Algeria. Pathogens, 13(5), article number 408. doi: 10.3390/pathogens13050408.

[27] Vitale, M., Galluzzo, P., Buffa, P.G., Carlino, E., Spezia, O., & Alduina, R. (2019). Comparison of antibiotic resistance profile and biofilm production of Staphylococcus aureus isolates derived from human specimens and animal-derived samples. Antibiotics, 8(3), article number 97. doi: 10.3390/antibiotics8030097.